| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 综述 | 第8-23页 |
| 1.1 发酵食品微生物概况 | 第8-11页 |
| 1.1.1 发酵食品微生物简介 | 第8-9页 |
| 1.1.2 发酵食品-红曲微生物简介 | 第9-11页 |
| 1.2 微生物分离、分析技术概况 | 第11-12页 |
| 1.3 微生物分离、分析新技术 | 第12-16页 |
| 1.3.1 流式细胞技术 | 第12页 |
| 1.3.2 免疫磁性颗粒分离技术 | 第12-13页 |
| 1.3.3 毛细管电泳技术 | 第13页 |
| 1.3.4 场流分离技术 | 第13-14页 |
| 1.3.5 PCR-DGGE技术 | 第14页 |
| 1.3.6 实时荧光定量PCR技术 | 第14-15页 |
| 1.3.7 焦磷酸测序技术 | 第15页 |
| 1.3.8 其他新技术 | 第15-16页 |
| 1.4 细菌离子交换色谱技术 | 第16-20页 |
| 1.4.1 细菌色谱技术应用概述 | 第16页 |
| 1.4.2 细菌离子交换色谱技术 | 第16-20页 |
| 1.5 本课题的背景与意义 | 第20-22页 |
| 1.5.1 本课题的背景 | 第20-21页 |
| 1.5.2 本课题的意义 | 第21-22页 |
| 1.6 本课题的主要内容、目标和创新点 | 第22-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-35页 |
| 2.1 仪器设备与材料 | 第23-26页 |
| 2.1.1 仪器设备 | 第23页 |
| 2.1.2 主要药品、试剂和材料 | 第23-26页 |
| 2.1.3 微生物培养基 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-35页 |
| 2.2.1 红曲细菌样品制备条件的优化 | 第26-28页 |
| 2.2.2 细菌色谱体系及方法 | 第28页 |
| 2.2.3 最佳色谱条件的确定 | 第28-29页 |
| 2.2.4 红曲细菌的色谱表征 | 第29-30页 |
| 2.2.5 细菌峰的PCR-DGGE分析 | 第30-34页 |
| 2.2.6 细菌峰的测序分析及系统发育树的构建 | 第34-35页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第35-67页 |
| 3.1 红曲细菌样品制备条件的优化 | 第35-41页 |
| 3.1.1 pH值的优化 | 第35-36页 |
| 3.1.2 NaCl浓度的优化 | 第36-37页 |
| 3.1.3 尿素浓度的优化 | 第37-38页 |
| 3.1.4 硫酸铵浓度的优化 | 第38-40页 |
| 3.1.5 红曲细菌样品制备小结 | 第40-41页 |
| 3.2 细菌色谱体系与方法 | 第41-42页 |
| 3.3 最佳色谱条件的确定 | 第42-46页 |
| 3.3.1 样品上样浓度的确定 | 第42-43页 |
| 3.3.2 pH值的确定 | 第43-44页 |
| 3.3.3 最大洗脱盐浓度的确定 | 第44-45页 |
| 3.3.4 上样量的确定 | 第45-46页 |
| 3.3.6 最佳色谱条件的确定小结 | 第46页 |
| 3.4 红曲细菌的色谱表征 | 第46-53页 |
| 3.4.1 不同洗脱梯度的色谱分析 | 第46-49页 |
| 3.4.2 细菌洗脱峰光学显微镜观察 | 第49-53页 |
| 3.5 细菌峰的DGGE分析 | 第53-62页 |
| 3.5.1 细菌峰基因组DNA的提取 | 第53-55页 |
| 3.5.2 细菌峰16S rDNA基因序列全长PCR扩增 | 第55-57页 |
| 3.5.3 细菌峰16S rDNA基因V3可变区的PCR扩增 | 第57-61页 |
| 3.5.4 细菌峰的DGGE分析 | 第61-62页 |
| 3.5.5 细菌峰DGGE分析小结 | 第62页 |
| 3.6 细菌峰的测序分析 | 第62-67页 |
| 3.6.1 细菌峰的测序结果 | 第62页 |
| 3.6.2 细菌峰16S rDNA序列同源性的比较 | 第62-64页 |
| 3.6.3 系统发育树构建 | 第64页 |
| 3.6.4 细菌峰的测序分析小结 | 第64-67页 |
| 结论与展望 | 第67-70页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 展望 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 附录 | 第78-87页 |
| 个人简历 | 第87页 |
| 个人概况 | 第87页 |
| 学习经历 | 第87页 |
| 在读期间已发表和录用的论文 | 第87页 |
| 参与的科研项目及成果 | 第87页 |
