| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第1章 前言 | 第11-20页 |
| 1.1 组蛋白去乙酰化酶概述 | 第11-15页 |
| 1.1.1 组蛋白乙酰化和去乙酰化 | 第11-12页 |
| 1.1.2 乙酰化与转录的关系 | 第12页 |
| 1.1.3 组蛋白乙酰化转移酶 | 第12-14页 |
| 1.1.4 组蛋白去乙酰化酶 | 第14-15页 |
| 1.2 组蛋白去乙酰化酶家族 | 第15-18页 |
| 1.2.1 组蛋白去乙酰化酶家族分类 | 第15-16页 |
| 1.2.2 SIR2家族 | 第16-17页 |
| 1.2.3 SIR2家族的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3 本课题研究的目的及意义 | 第18-19页 |
| 1.4 实验技术路线 | 第19-20页 |
| 第2章 材料与方法 | 第20-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-28页 |
| 2.1.1 植物材料和菌株 | 第20页 |
| 2.1.2 试剂和抗生素 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要实验仪器以及设备 | 第21页 |
| 2.1.4 主要试剂和培养基配置 | 第21-28页 |
| 2.2 试验方法 | 第28-40页 |
| 2.2.1 植物表达载体的阳性克隆鉴定 | 第28-30页 |
| 2.2.2 OsSRT1-RNAi拟南芥的筛选 | 第30-31页 |
| 2.2.3 对转基因拟南芥进行非生物胁迫处理 | 第31页 |
| 2.2.4 转基因植株生理生化指标测定 | 第31-35页 |
| 2.2.5 水稻的组织培养和遗传转化 | 第35-37页 |
| 2.2.6 转基因水稻的分子检测 | 第37-39页 |
| 2.2.7 对转基因水稻进行胁迫处理 | 第39页 |
| 2.2.8 转基因水稻生理生化指标检测 | 第39-40页 |
| 第3章 结果与分析 | 第40-73页 |
| 3.1 植物表达载体的阳性克隆鉴定 | 第40-41页 |
| 3.1.1 植物表达载体pGWB2-OsSRT1质粒PCR验证 | 第40页 |
| 3.1.2 阳性克隆质粒DNA酶切验证 | 第40-41页 |
| 3.2 OsSRT1-RNAi拟南芥的筛选 | 第41-44页 |
| 3.2.1 OsSRT1-RNAi拟南芥T0代筛选 | 第41-43页 |
| 3.2.2 拟南芥T2代纯合子鉴定 | 第43-44页 |
| 3.3 非生物胁迫下植株表现 | 第44-59页 |
| 3.3.1 植株生长状况的测定 | 第44-47页 |
| 3.3.2 渗透调节物质标准曲线的制作 | 第47-49页 |
| 3.3.3 转基因拟南芥在胁迫下脯氨酸含量的影响 | 第49-51页 |
| 3.3.4 胁迫处理对转基因拟南芥可溶性蛋白含量的影响 | 第51-53页 |
| 3.3.5 胁迫下转基因拟南芥叶绿素含量的变化 | 第53-55页 |
| 3.3.6 转基因拟南芥胁迫处理下与电导率的关系 | 第55-57页 |
| 3.3.7 胁迫处理对转基因拟南芥抗氧化系统的影响 | 第57-59页 |
| 3.4 水稻转基因相关因素的影响 | 第59-63页 |
| 3.5.1 不同浓度 2,4-D对愈伤组织的诱导 | 第59-60页 |
| 3.5.2 NAA、6-BA、KT对愈伤组织分化的影响 | 第60页 |
| 3.5.3 共培养天数对转化率和长菌率的影响 | 第60-61页 |
| 3.5.4 侵染时间对转化率和长菌率的影响 | 第61-62页 |
| 3.5.5 脱菌方式对转化率和长菌率的影响 | 第62-63页 |
| 3.5 水稻的组织培养 | 第63-67页 |
| 3.6 转基因水稻的分子检测 | 第67-68页 |
| 3.7 转基因水稻胁迫下生理生化指标分析 | 第68-73页 |
| 3.8.1 胁迫下转基因水稻脯氨酸的测定 | 第68-70页 |
| 3.8.2 胁迫下转基因水稻过氧化氢酶活测定 | 第70-73页 |
| 第4章 讨论 | 第73-75页 |
| 4.1 目的基因的选择 | 第73页 |
| 4.2 筛选水稻愈伤组织时选择羧苄青霉素和头孢霉素的效果 | 第73页 |
| 4.3 提高愈伤组织的转化效率 | 第73-74页 |
| 4.4 非生物胁迫对转基因植株的影响 | 第74页 |
| 4.5 未来试验思路 | 第74-75页 |
| 结论 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
