| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 第1章 绪论 | 第9-29页 |
| 1.1 得克隆的研究 | 第9-16页 |
| 1.1.1 得克隆的基本性质 | 第9-10页 |
| 1.1.2 得克隆在环境中的分布 | 第10-11页 |
| 1.1.3 得克隆的可富集性 | 第11-12页 |
| 1.1.4 得克隆毒理学研究现状 | 第12-16页 |
| 1.1.5 本课题组对得克隆的前期研究基础 | 第16页 |
| 1.2 环境雌激素效应的相关研究 | 第16-19页 |
| 1.2.1 环境雌激素简介 | 第16-19页 |
| 1.3 蛋白质组学的相关研究 | 第19-29页 |
| 1.3.1 蛋白质组学的研究内容 | 第19-23页 |
| 1.3.2 蛋白质组学研究的核心技术 | 第23-27页 |
| 1.3.3 蛋白组学在环境雌激素分子机制中的应用 | 第27-29页 |
| 第2章 材料与方法 | 第29-42页 |
| 2.1 实验材料 | 第29页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第29页 |
| 2.1.2 得克隆 | 第29页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-42页 |
| 2.2.1 常用试剂 | 第29-31页 |
| 2.2.2 常用溶液配方 | 第31-32页 |
| 2.2.4 MCF-7细胞蛋白质的提取 | 第32-33页 |
| 2.2.5 MCF-7细胞蛋白质的浓度测定 | 第33页 |
| 2.2.6 蛋白质双向电泳检测 | 第33-35页 |
| 2.2.7 蛋白质银铵染色 | 第35页 |
| 2.2.8 胶内蛋白点酶切 | 第35-36页 |
| 2.2.9 Western blot检测 | 第36-37页 |
| 2.2.10 实时荧光定量PCR检测 | 第37-41页 |
| 2.2.12 实验技术路线 | 第41-42页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第42-67页 |
| 3.1 DP暴露浓度及时间的确定 | 第42页 |
| 3.2 MCF-7细胞蛋白质的提取及浓度测定 | 第42-43页 |
| 3.3 助溶剂DMSO对MCF-7细胞表达谱的影响 | 第43-44页 |
| 3.4 DP对MCF-7细胞蛋白表达谱的影响 | 第44-67页 |
| 3.4.1 DP处理MCF-7细胞双向电泳凝胶 | 第44-47页 |
| 3.4.2 质谱鉴定差异表达的蛋白质 | 第47-52页 |
| 3.4.3 DP引起的MCF-7细胞差异表达蛋白质GO分析 | 第52-56页 |
| 3.4.4 差异表达的蛋白质信息及DP可能的作用机制分析 | 第56-62页 |
| 3.4.5 质谱结果验证 | 第62-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 作者简介 | 第78页 |
