| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第1章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 研究背景 | 第11页 |
| 1.2 鼓槌石斛研究概况 | 第11-13页 |
| 1.2.1 鼓槌石斛的生药学研究 | 第11页 |
| 1.2.2 鼓槌石斛的化学成分 | 第11-12页 |
| 1.2.3 鼓槌石斛的药理学作用 | 第12-13页 |
| 1.2.4 鼓槌石斛中有效成分毛兰素的药理学研究 | 第13页 |
| 1.3 肿瘤血管生成概述 | 第13-18页 |
| 1.3.1 肿瘤与血管生成 | 第13-16页 |
| 1.3.2 肿瘤血管生成拟态 | 第16页 |
| 1.3.3 肿瘤血管生成抑制剂研究 | 第16-18页 |
| 1.4 IDO概述 | 第18-20页 |
| 1.4.1 IDO的生物学特性 | 第18页 |
| 1.4.2 癌症发病机制中IDO调节异常 | 第18-20页 |
| 1.5 研究目标、内容、创新点和意义 | 第20-22页 |
| 1.5.1 研究目标 | 第20页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第20-21页 |
| 1.5.3 创新点 | 第21页 |
| 1.5.4 研究意义 | 第21-22页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第22-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第22页 |
| 2.1.2 实验药物 | 第22页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第22-24页 |
| 2.2 仪器与设备 | 第24-25页 |
| 2.3 常用试剂的配制 | 第25-28页 |
| 2.4 实验方法 | 第28-32页 |
| 2.4.1 细胞传代、冻存与复苏 | 第28页 |
| 2.4.2 细胞计数 | 第28-29页 |
| 2.4.3 细胞总蛋白的提取及定量 | 第29页 |
| 2.4.4 蛋白免疫印迹(Western Blot) | 第29-30页 |
| 2.4.5 细胞总RNA的提取 | 第30页 |
| 2.4.6 琼脂糖凝胶电泳 | 第30-32页 |
| 第3章 IDO过表达对小鼠Lewis肺癌细胞生物学行为的影响 | 第32-42页 |
| 3.1 前言 | 第32页 |
| 3.2 实验材料 | 第32-33页 |
| 3.2.1 细胞株 | 第32页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第32-33页 |
| 3.2.3 主要设备 | 第33页 |
| 3.3 实验方法 | 第33-36页 |
| 3.3.1 生长曲线的测定 | 第33页 |
| 3.3.2 Transwell迁移实验 | 第33-34页 |
| 3.3.3 Transwell侵袭实验 | 第34页 |
| 3.3.4 血管生成实验 | 第34页 |
| 3.3.5 血管生成拟态实验 | 第34页 |
| 3.3.6 Western blot实验 | 第34页 |
| 3.3.7 总RNA反转录 | 第34-35页 |
| 3.3.8 PCR扩增目的基因 | 第35-36页 |
| 3.3.9 统计学分析 | 第36页 |
| 3.4 实验结果 | 第36-41页 |
| 3.4.1 2LL-IDO细胞中IDO过表达的验证 | 第36-37页 |
| 3.4.2 IDO过表达对2LL细胞形态的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.3 IDO过表达对2LL细胞增殖能力的影响 | 第38页 |
| 3.4.4 IDO过表达对2LL细胞浸润转移能力的影响 | 第38-39页 |
| 3.4.5 IDO过表达对HUVEC细胞血管生成能力的影响 | 第39-40页 |
| 3.4.6 IDO过表达对2LL细胞血管生成拟态的影响 | 第40-41页 |
| 3.5 讨论 | 第41-42页 |
| 第4章 毛兰素对IDO过表达小鼠Lewis肺癌细胞中IDO的调控作用 | 第42-49页 |
| 4.1 前言 | 第42页 |
| 4.2 实验材料 | 第42-43页 |
| 4.2.1 细胞株 | 第42页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第42页 |
| 4.2.3 主要设备 | 第42-43页 |
| 4.3 实验方法 | 第43-45页 |
| 4.3.1 MTT实验 | 第43页 |
| 4.3.2 Western blot实验 | 第43页 |
| 4.3.3 Real-time PCR实验 | 第43-44页 |
| 4.3.4 高效液相色谱 | 第44-45页 |
| 4.3.5 统计学分析 | 第45页 |
| 4.4 实验结果 | 第45-48页 |
| 4.4.1 毛兰素对2LL-IDO及正常LO2细胞存活率的影响 | 第45页 |
| 4.4.2 毛兰素对2LL-IDO细胞中IDO表达的影响 | 第45-47页 |
| 4.4.3 毛兰素对2LL-IDO细胞中IDO酶活性的影响 | 第47-48页 |
| 4.5 讨论 | 第48-49页 |
| 第5章 毛兰素调控IDO诱导的浸润转移及血管生成 | 第49-54页 |
| 5.1 前言 | 第49页 |
| 5.2 实验材料 | 第49页 |
| 5.2.1 细胞株 | 第49页 |
| 5.2.2 主要试剂 | 第49页 |
| 5.2.3 主要设备 | 第49页 |
| 5.3 实验方法 | 第49-50页 |
| 5.3.1 Transwell迁移实验 | 第49-50页 |
| 5.3.2 Transwell侵袭实验 | 第50页 |
| 5.3.3 血管生成实验 | 第50页 |
| 5.3.4 血管生成拟态实验 | 第50页 |
| 5.3.5 统计学分析 | 第50页 |
| 5.4 实验结果 | 第50-53页 |
| 5.4.1 毛兰素抑制IDO诱导的2LL细胞浸润转移 | 第50-51页 |
| 5.4.2 毛兰素抑制IDO诱导的HUVEC细胞血管生成 | 第51-52页 |
| 5.4.3 毛兰素抑制IDO诱导的2LL细胞血管生成拟态 | 第52-53页 |
| 5.5 讨论 | 第53-54页 |
| 第6章 毛兰素调控IDO诱导的血管生成研究 | 第54-60页 |
| 6.1 前言 | 第54页 |
| 6.2 实验材料 | 第54-55页 |
| 6.2.1 细胞株 | 第54页 |
| 6.2.2 主要试剂 | 第54-55页 |
| 6.2.3 主要设备 | 第55页 |
| 6.3 实验方法 | 第55页 |
| 6.3.1 Western blot实验 | 第55页 |
| 6.3.2 Real-time PCR实验 | 第55页 |
| 6.3.3 统计学分析 | 第55页 |
| 6.4 实验结果 | 第55-59页 |
| 6.4.1 毛兰素调控IDO诱导的肿瘤血管生成过程中关键分子的表达 | 第55-57页 |
| 6.4.2 毛兰素调控IDO诱导的炎性微环境中关键分子的表达 | 第57-59页 |
| 6.5 讨论 | 第59-60页 |
| 第7章 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 发表论文情况 | 第71页 |
