| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-48页 |
| 第一节 褐飞虱的生物学特征及其危害 | 第15-20页 |
| 1.1 褐飞虱的生物学特性及其取食行为 | 第15-16页 |
| 1.2 褐飞虱在世界的分布及其危害 | 第16-17页 |
| 1.3 褐飞虱在我国的分布及其危害 | 第17-20页 |
| 第二节 水稻抗褐飞虱遗传基础研究 | 第20-27页 |
| 2.1 水稻抗褐飞虱主基因遗传和分子定位 | 第20-22页 |
| 2.2 水稻抗褐飞虱QTL分析 | 第22-23页 |
| 2.3 水稻抗褐飞虱基因与褐飞虱生物型之间的互作关系 | 第23-25页 |
| 2.4 抗褐飞虱基因的育种利用现状 | 第25-27页 |
| 第三节 植物抗虫的分子机制 | 第27-47页 |
| 3.1 植物抗虫的三种类型 | 第27-31页 |
| 3.1.1 植物对害虫的抗生性机制 | 第27页 |
| 3.1.2 植物对害虫的趋避性机制 | 第27-28页 |
| 3.1.3 植物的耐虫性机制 | 第28-30页 |
| 3.1.4 植物抗虫的间接机制 | 第30-31页 |
| 3.2 已克隆的抗虫基因 | 第31-35页 |
| 3.2.1 抗蚜虫和线虫的植物基因-Mi | 第31-32页 |
| 3.2.2 Bt杀虫晶体蛋白基因 | 第32页 |
| 3.2.3 营养杀虫蛋白基因 | 第32-33页 |
| 3.2.4 蛋白酶抑制剂基因 | 第33页 |
| 3.2.5 淀粉酶抑制基因 | 第33-34页 |
| 3.2.6 外源凝集素基因 | 第34-35页 |
| 3.3 植物抗虫基因表达的信号转导 | 第35-47页 |
| 3.3.1 系统素与抗虫基因的激活 | 第35-37页 |
| 3.3.2 茉莉酸及其甲酯与抗虫基因的激活 | 第37-38页 |
| 3.3.3 SA与抗虫基因的激活 | 第38-40页 |
| 3.3.4 乙烯与抗虫基因的激活 | 第40页 |
| 3.3.5 ABA与抗虫基因的激活 | 第40-41页 |
| 3.3.6 活性氧与抗虫基因的激活 | 第41-42页 |
| 3.3.7 各信号分子间的互作关系 | 第42-47页 |
| 第四节 本研究的目的及意义 | 第47-48页 |
| 第二章 褐飞虱在抗褐飞虱水稻品种上的取食行为研究 | 第48-61页 |
| 1 材料方法 | 第49-52页 |
| 1.1 材料 | 第49页 |
| 1.2 虫源 | 第49页 |
| 1.3 抗虫性鉴定 | 第49页 |
| 1.4 趋避性鉴定 | 第49-50页 |
| 1.5 死亡率的鉴定 | 第50-51页 |
| 1.6 取食量的评价 | 第51页 |
| 1.7 耐虫性鉴定及抗虫类型的划分 | 第51-52页 |
| 2 结果 | 第52-58页 |
| 2.1 不同水稻品种苗期对褐飞虱趋避性的比较 | 第52-58页 |
| 2.3 不同抗虫水稻品种的耐虫性评价 | 第58页 |
| 3 讨论 | 第58-61页 |
| 第三章 水稻抗褐飞虱主基因BPH20的精细定位 | 第61-69页 |
| 1 材料和方法 | 第62-63页 |
| 1.1 材料与虫源 | 第62页 |
| 1.2 抗虫性测定 | 第62页 |
| 1.3 DNA样品制备和SSR分析 | 第62-63页 |
| 1.4 SSR和InDels标记的开发 | 第63页 |
| 2 结果 | 第63-69页 |
| 2.1 BPH20紧密连锁SSR标记的鉴定 | 第63-66页 |
| 2.2 BPH20的精细定位 | 第66-69页 |
| 第四章 越南地方品种YAGYAW(YA)抗褐飞虱基因的定位 | 第69-79页 |
| 1 材料和方法 | 第71-73页 |
| 1.1 供试材料 | 第71页 |
| 1.2 褐飞虱 | 第71页 |
| 1.3 抗虫性测定 | 第71-72页 |
| 1.4 DNA样品制备和SSR分析 | 第72页 |
| 1.5 连锁分析 | 第72-73页 |
| 1.6 QTL定位 | 第73页 |
| 2 结果与分析 | 第73-77页 |
| 2.1 亲本、F_1植株及F_2分离群体的抗虫性表现 | 第73-74页 |
| 2.2 分子连锁图谱的构建 | 第74-76页 |
| 2.3 抗褐飞虱QTL的定位 | 第76-77页 |
| 3 讨论 | 第77-79页 |
| 第五章 褐飞虱刺吸诱导水稻防御相关酶的活性变化 | 第79-93页 |
| 1 材料与方法 | 第80-84页 |
| 1.1 材料 | 第80页 |
| 1.2 LOX活力的测定 | 第80-81页 |
| 1.3 HPL活力的测定 | 第81页 |
| 1.4 丙二醛含量的测定 | 第81页 |
| 1.5 PAL活力的测定 | 第81-82页 |
| 1.6 CAT活力的测定 | 第82页 |
| 1.7 H_2O_2含量的测定 | 第82页 |
| 1.8 干扰载体的构建 | 第82-84页 |
| 2 结果 | 第84-90页 |
| 2.1 褐飞虱刺吸对LOX活力的影响 | 第84-85页 |
| 2.2 褐飞虱刺吸对HPL活力的影响 | 第85页 |
| 2.3 褐飞虱刺吸对丙二醛含量的影响 | 第85-87页 |
| 2.4 褐飞虱刺吸对PAL酶活力的影响 | 第87页 |
| 2.5 褐飞虱刺吸对CAT活力的影响 | 第87页 |
| 2.6 褐飞虱刺吸对H_2O_2含量的影响 | 第87-90页 |
| 2.7 PAL,AOS和ACC干扰载体的构建 | 第90页 |
| 3 讨论 | 第90-93页 |
| 第六章 一氧化氮的产生参与了水稻抗褐飞虱防御反应 | 第93-110页 |
| 1 材料方法 | 第94-98页 |
| 1.1 材料和虫源 | 第94页 |
| 1.2 NO含量的测定 | 第94-95页 |
| 1.3 抗褐飞虱评价 | 第95页 |
| 1.4 根长,株高,根重和侧根数目的考察 | 第95页 |
| 1.5 气孔开度的考察 | 第95-96页 |
| 1.6 相对含水量的测定 | 第96页 |
| 1.7 RNA提取与RT-PCR | 第96页 |
| 1.8 硝酸还原酶活力的测定 | 第96-97页 |
| 1.9 一氧化氮合成活力的测定 | 第97-98页 |
| 2 结果 | 第98-107页 |
| 2.1 褐飞虱取食诱导产生NO部分依赖NO合成酶活性,而与硝酸还原酶无关 | 第98-102页 |
| 2.2 NO通过调节气孔开关及根系形态建成降低褐飞虱取食造成的水分损失 | 第102-107页 |
| 2.3 褐飞虱取食及NO处理对干旱胁迫相关基因影响 | 第107页 |
| 3 讨论 | 第107-110页 |
| 第七章 全文结论 | 第110-113页 |
| 参考文献 | 第113-136页 |
| 在读期间发表论文 | 第136-137页 |
| 已整理待发表的论文 | 第137-139页 |
| 致谢 | 第139页 |
