摘要 | 第3-6页 |
abstract | 第6-8页 |
第1章 前言 | 第14-22页 |
1.1 血栓发生现状及及其生理特点 | 第14-16页 |
1.1.1 生物特点 | 第14-15页 |
1.1.2 物理特点 | 第15-16页 |
1.2 纳米载体用于血栓诊断的研究方向 | 第16-19页 |
1.2.1 结合血栓生理特点的研究方向 | 第16-17页 |
1.2.2 纳米载体在不同成像方式的研究 | 第17-19页 |
1.3 脂质纳米载体在血栓诊断中的应用 | 第19-21页 |
1.3.1 微泡 | 第19-20页 |
1.3.2 纳米乳 | 第20页 |
1.3.3 脂质纳米粒 | 第20页 |
1.3.4 脂质体 | 第20-21页 |
1.4 本课题的研究思路及其创新点 | 第21-22页 |
第2章 1,3-二棕榈酰胺磷脂酰胆碱的合成 | 第22-31页 |
2.1 材料与仪器 | 第22-23页 |
2.1.1 试剂 | 第22页 |
2.1.2 仪器 | 第22页 |
2.1.3 溶液的配制 | 第22-23页 |
2.2 实验方法 | 第23-26页 |
2.2.1 Boc保护乙醇胺的合成 | 第24页 |
2.2.2 化合物2的合成 | 第24页 |
2.2.3 化合物3的合成 | 第24页 |
2.2.4 化合物4的合成 | 第24-25页 |
2.2.5 化合物5的合成 | 第25页 |
2.2.6 化合物6的合成 | 第25页 |
2.2.7 化合物7的合成 | 第25页 |
2.2.8 Pad-PC-Pad的合成 | 第25-26页 |
2.3 结果与讨论 | 第26-30页 |
2.3.1 Boc保护的乙醇胺的合成 | 第26页 |
2.3.2 化合物2的合成 | 第26页 |
2.3.3 化合物3的合成 | 第26-27页 |
2.3.4 化合物4的合成 | 第27页 |
2.3.5 化合物5的合成 | 第27页 |
2.3.6 化合物6的合成 | 第27-28页 |
2.3.7 化合物7的合成 | 第28-29页 |
2.3.8 Pad-PC-Pad的合成 | 第29-30页 |
2.4 小结 | 第30-31页 |
第3章 脂质体的制备和表征 | 第31-41页 |
3.1 材料与仪器 | 第31-32页 |
3.1.1 试剂 | 第31页 |
3.1.2 仪器 | 第31页 |
3.1.3 溶液的配制 | 第31-32页 |
3.2 实验方法 | 第32-35页 |
3.2.1 脂质体的制备 | 第32-34页 |
3.2.2 SSSL和TL的表征 | 第34页 |
3.2.3 载体稳定性 | 第34-35页 |
3.2.4 数据处理 | 第35页 |
3.3 结果与讨论 | 第35-40页 |
3.3.1 脂质体的制备 | 第35-37页 |
3.3.2 TL和SSSL的表征 | 第37-40页 |
3.4 小结 | 第40-41页 |
第4章 剪切力敏感性的评价 | 第41-50页 |
4.1 材料与仪器 | 第41-42页 |
4.1.1 试剂 | 第41页 |
4.1.2 仪器 | 第41页 |
4.1.3 溶液的配制 | 第41-42页 |
4.2 实验方法 | 第42-44页 |
4.2.1 不同处方脂质体剪切力敏感性评价 | 第42页 |
4.2.2 不同温度下脂质体剪切力敏感性评价 | 第42-43页 |
4.2.3 体外模拟 | 第43-44页 |
4.2.4 数据处理 | 第44页 |
4.3 实验结果 | 第44-49页 |
4.3.1 不同处方脂质体剪切力敏感性评价 | 第44-45页 |
4.3.2 不同温度下剪切力敏感性评价 | 第45-47页 |
4.3.3 体外模拟评价 | 第47-49页 |
4.4 小结 | 第49-50页 |
第5章 脂质体细胞水平评价 | 第50-58页 |
5.1 材料与仪器 | 第50-51页 |
5.1.1 试剂 | 第50页 |
5.1.2 仪器 | 第50页 |
5.1.3 溶液的配制 | 第50-51页 |
5.1.4 HUVEC细胞的培养 | 第51页 |
5.2 实验方法 | 第51-53页 |
5.2.1 Di I标记脂质体的制备 | 第51页 |
5.2.2 TL和SSSL对HUVEC细胞的毒性评价 | 第51-52页 |
5.2.3 HUVEC细胞对TL和SSSL摄取研究 | 第52-53页 |
5.3 实验结果及讨论 | 第53-57页 |
5.3.1 TL和SSSL对HUVEC细胞的毒性研究 | 第53-54页 |
5.3.2 HUVEC细胞对TL和SSSL在不同时间点摄取定量研究 | 第54-55页 |
5.3.3 HUVEC细胞对高剪切前后TL和SSSL摄取研究 | 第55-56页 |
5.3.4 HUVEC细胞对不同功率下剪切的SSSL摄取定量研究 | 第56-57页 |
5.4 小结 | 第57-58页 |
第6章 体内血栓诊断效果评价 | 第58-62页 |
6.1 材料与仪器 | 第58-59页 |
6.1.1 试剂和仪器 | 第58页 |
6.1.2 实验动物 | 第58-59页 |
6.1.3 溶液的配制 | 第59页 |
6.2 实验方法 | 第59页 |
6.2.1 Di I标记脂质体的制备 | 第59页 |
6.2.2 动物血栓造模 | 第59页 |
6.2.3 血栓诊断效果评价 | 第59页 |
6.3 实验结果及讨论 | 第59-61页 |
6.3.1 动物血栓造模 | 第59-60页 |
6.3.2 血栓诊断效果评价 | 第60-61页 |
6.4 小结 | 第61-62页 |
第7章 总结与展望 | 第62-64页 |
7.1 全文总结 | 第62-63页 |
7.2 主要创新点 | 第63页 |
7.3 展望 | 第63-64页 |
致谢 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-71页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第71-72页 |
综述 | 第72-81页 |
参考文献 | 第77-81页 |