| 符号说明 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-14页 |
| 英文摘要 | 第14-18页 |
| 前言 | 第19-21页 |
| 1 实验材料 | 第21-24页 |
| 1.1 实验动物 | 第21页 |
| 1.2 实验药物 | 第21页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第21-23页 |
| 1.4 主要实验设备 | 第23-24页 |
| 2 实验设计及方法 | 第24-34页 |
| 2.1 分组及造模 | 第24-25页 |
| 2.1.1 分组 | 第24页 |
| 2.1.2 TNBS模型 | 第24-25页 |
| 2.2 药物配制及供给方案 | 第25-26页 |
| 2.2.1 配药 | 第25页 |
| 2.2.2 给药 | 第25-26页 |
| 2.3 一般表现评估 | 第26页 |
| 2.4 结肠大体形态学评估 | 第26-27页 |
| 2.5 组织学评分 | 第27页 |
| 2.6 免疫组织化学实验 | 第27-28页 |
| 2.7 ELISA法检测实验 | 第28-29页 |
| 2.8 Western Blot实验 | 第29-31页 |
| 2.8.1 组织样品制备 | 第29-30页 |
| 2.8.2 BCA法蛋白定量 | 第30页 |
| 2.8.3 Western Blot | 第30-31页 |
| 2.9 RT-PCR实验 | 第31-34页 |
| 2.9.1 提取组织RNA | 第31-32页 |
| 2.9.2 逆转录提取cDNA | 第32页 |
| 2.9.3 设计引物序列 | 第32-33页 |
| 2.9.4 RT-PCR反应 | 第33-34页 |
| 2.9.5 数据计算 | 第34页 |
| 2.10 统计方法 | 第34页 |
| 3 实验结果 | 第34-53页 |
| 3.1 一般情况评估 | 第34-36页 |
| 3.1.1 造模 | 第34页 |
| 3.1.2 给药 | 第34-36页 |
| 3.2 结肠大体形态学评估 | 第36-38页 |
| 3.3 组织学评分 | 第38-39页 |
| 3.4 免疫组织化学实验 | 第39-43页 |
| 3.5 ELISA法检测实验 | 第43-46页 |
| 3.5.1 INF-γ | 第43页 |
| 3.5.2 IL-4 | 第43-44页 |
| 3.5.3 IL-17 | 第44页 |
| 3.5.4 IL-10 | 第44-46页 |
| 3.6 Western Blot实验 | 第46-50页 |
| 3.6.1 T-bet | 第46-47页 |
| 3.6.2 GATA-3 | 第47页 |
| 3.6.3 ROR-γt | 第47页 |
| 3.6.4 Foxp3 | 第47-50页 |
| 3.7 RT-PCR实验 | 第50-53页 |
| 3.7.1 T-bet | 第50页 |
| 3.7.2 GATA-3 | 第50-51页 |
| 3.7.3 ROR-γt | 第51页 |
| 3.7.4 Foxp3 | 第51-53页 |
| 4 讨论 | 第53-59页 |
| 4.1 炎症性肠病大鼠模型的特点分析 | 第53-55页 |
| 4.2 独一味环烯醚萜苷对大鼠炎症性肠病的治疗作用 | 第55-56页 |
| 4.3 IGLR在两种炎症性肠病模型中的作用机制 | 第56-59页 |
| 5 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 文献综述 | 第65-97页 |
| 参考文献 | 第85-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
| 攻读学位期间的主要研究成果 | 第98页 |