| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-16页 |
| 文献回顾 | 第16-26页 |
| 1 急性缺血性脑损伤的病理生理学改变 | 第16-24页 |
| 2 马来酸桂哌齐特的神经保护机制 | 第24-26页 |
| 第一部分 CM对实验性脑缺血治疗效果的研究 | 第26-36页 |
| 引言 | 第26页 |
| 1 材料 | 第26-28页 |
| 1.1 实验动物 | 第26-27页 |
| 1.2 主要试剂及材料 | 第27页 |
| 1.3 主要仪器 | 第27页 |
| 1.4 实验用主要试剂的配制 | 第27-28页 |
| 2 方法 | 第28-31页 |
| 2.1 马来酸桂哌齐特最佳治疗剂量探索 | 第28-30页 |
| 2.2 马来酸桂哌齐特对实验性脑缺血治疗效果的验证 | 第30-31页 |
| 2.3 统计学处理 | 第31页 |
| 3 结果 | 第31-33页 |
| 3.1 马来酸桂哌齐特最佳治疗剂量 | 第31页 |
| 3.2 马来酸桂哌齐特对实验性脑缺血模型大鼠的治疗效果 | 第31-33页 |
| 4 讨论 | 第33-36页 |
| 第二部分 CM对缺血性脑损伤后细胞死亡类型的影响研究 | 第36-50页 |
| 引言 | 第36页 |
| 1 材料 | 第36-39页 |
| 1.1 实验动物 | 第36-37页 |
| 1.2 主要试剂及材料 | 第37-38页 |
| 1.3 主要仪器 | 第38页 |
| 1.4 实验用主要试剂的配制 | 第38-39页 |
| 2 方法 | 第39-43页 |
| 2.1 实验分组 | 第39-40页 |
| 2.2 大鼠MCAO模型制作及神经行为学评估 | 第40页 |
| 2.3 实验动物灌注步骤 | 第40页 |
| 2.4 脑蛋白样本的提取 | 第40-41页 |
| 2.5 标本蛋白浓度测定（BCA法） | 第41页 |
| 2.6 免疫荧光染色（TUNEL/Cleaved IL-1β） | 第41-42页 |
| 2.7 Western blot | 第42-43页 |
| 2.8 统计学分析 | 第43页 |
| 3 结果 | 第43-48页 |
| 3.1 免疫荧光染色（TUNEL/Cleaved IL-1β 双标） | 第43-47页 |
| 3.2 Western blot | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 第三部分 CM对缺血性脑损伤氧化还原状态失衡改善作用的研究 | 第50-59页 |
| 引言 | 第50页 |
| 1 材料 | 第50-51页 |
| 1.1 实验动物 | 第50-51页 |
| 1.2 主要试剂及材料 | 第51页 |
| 1.3 主要仪器 | 第51页 |
| 1.4 实验用主要试剂的配制 | 第51页 |
| 2 方法 | 第51-56页 |
| 2.1 实验分组 | 第51页 |
| 2.2 大鼠MCAO模型制作及神经行为学评估 | 第51页 |
| 2.3 脑蛋白样本的提取 | 第51-52页 |
| 2.4 标本蛋白浓度测定（BCA法） | 第52页 |
| 2.5 氧化还原失衡指标检测 | 第52-55页 |
| 2.6 统计学分析 | 第55-56页 |
| 3 结果 | 第56-57页 |
| 4 讨论 | 第57-59页 |
| 小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-69页 |
| 个人简历和研究成果 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
