| 中文摘要 | 第14-17页 |
| ABSTRACT | 第17-20页 |
| 第一章 文献综述 | 第21-40页 |
| 1.1 丝状真菌的菌核概况 | 第21-22页 |
| 1.1.1 菌核的定义、结构 | 第21页 |
| 1.1.2 菌核的发育 | 第21-22页 |
| 1.1.3 影响菌核发生的因素与氧胁迫的关系 | 第22页 |
| 1.2 青霉及其分类研究 | 第22-26页 |
| 1.2.1 青霉分类历史和分类方法 | 第22-24页 |
| 1.2.2 ITS鉴定在在真菌分类学上的应用 | 第24-26页 |
| 1.3 活性氧(Reactive oxygen species,ROS) | 第26-28页 |
| 1.3.1 超氧阴离子自由基 | 第26-27页 |
| 1.3.2 羟基自由基 | 第27页 |
| 1.3.3 过氧化氢 | 第27-28页 |
| 1.3.4 其他种类的ROS | 第28页 |
| 1.4 ROS对生物体的氧化损伤 | 第28-29页 |
| 1.4.1 ROS对蛋白质的损伤作用 | 第28页 |
| 1.4.2 ROS对DNA的氧化损伤 | 第28-29页 |
| 1.4.3 ROS对脂质的氧化损伤 | 第29页 |
| 1.5 ROS对细胞的积极意义 | 第29页 |
| 1.6 微生物体内ROS的清除 | 第29-33页 |
| 1.6.1 SOD | 第30页 |
| 1.6.2 CAT | 第30-31页 |
| 1.6.3 GPX和GR | 第31页 |
| 1.6.4 抗坏血酸-谷胱苷肽循环(AsA-GSH循环) | 第31-32页 |
| 1.6.5 其它种类的ROS清除剂 | 第32-33页 |
| 1.7 本研究的目的、意义及主要内容 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-40页 |
| 第二章 青霉PT95和Q1菌株的平板培养研究 | 第40-54页 |
| 2.1 材料与方法 | 第40-42页 |
| 2.1.1 菌株 | 第40页 |
| 2.1.2 培养基 | 第40-41页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第41页 |
| 2.1.4 菌落特征观察 | 第41-42页 |
| 2.1.5 菌核形态观察 | 第42页 |
| 2.1.6 菌核生物量测定 | 第42页 |
| 2.1.7 类胡萝卜素的提取及含量测定 | 第42页 |
| 2.1.8 统计学分析 | 第42页 |
| 2.2 结果 | 第42-51页 |
| 2.2.1 不同培养基对菌落特征和菌核分化的影响 | 第42-47页 |
| 2.2.2 不同培养基对菌核形态和菌核生物量的影响 | 第47-50页 |
| 2.2.3 不同培养基对菌核类胡萝卜素含量和产率的影响 | 第50-51页 |
| 2.3 讨论 | 第51-52页 |
| 2.4 小结 | 第52页 |
| 参考文献 | 第52-54页 |
| 第三章 青霉PT95和Q1菌株的初步鉴定 | 第54-66页 |
| 3.1 材料与方法 | 第54-59页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第54-55页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第55页 |
| 3.1.3 菌株 | 第55页 |
| 3.1.4 青霉ITS rDNA序列分析 | 第55-59页 |
| 3.2 结果 | 第59-63页 |
| 3.2.1 退火温度对ITS rDNA的PCR扩增效果的影响 | 第59-60页 |
| 3.2.2 模板量对ITS rDNA的PCR扩增效果的影响 | 第60页 |
| 3.2.3 ITS rDNA的PCR扩增、纯化、克隆 | 第60-61页 |
| 3.2.4 测定序列与GenBank中核酸序列数据库同源性比较 | 第61-63页 |
| 3.3 讨论 | 第63页 |
| 参考文献 | 第63-66页 |
| 第四章 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核分化和类胡萝卜素代谢的影响 | 第66-82页 |
| 4.1 材料与方法 | 第67-68页 |
| 4.1.1 菌株 | 第67页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第67页 |
| 4.1.3 培养方法 | 第67页 |
| 4.1.4 菌落特征观察 | 第67页 |
| 4.1.5 菌核形态观察 | 第67页 |
| 4.1.6 菌核生物量的测定 | 第67页 |
| 4.1.7 类胡萝卜素含量测定 | 第67页 |
| 4.1.8 统计学分析 | 第67-68页 |
| 4.2 结果 | 第68-77页 |
| 4.2.1 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌落特征和菌核分化的影响 | 第68-72页 |
| 4.2.2 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核形态的影响 | 第72-75页 |
| 4.2.3 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核生物量和类胡萝卜素含量的影响 | 第75-77页 |
| 4.3 讨论 | 第77-79页 |
| 4.4 小结 | 第79页 |
| 参考文献 | 第79-82页 |
| 第五章 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株脂质过氧化及抗氧化代谢的影响 | 第82-110页 |
| 5.1 材料与方法 | 第83-88页 |
| 5.1.1 菌株 | 第83页 |
| 5.1.2 培养方法 | 第83页 |
| 5.1.3 主要仪器 | 第83-84页 |
| 5.1.4 试剂 | 第84页 |
| 5.1.5 脂质过氧化水平测定 | 第84页 |
| 5.1.6 抗氧化性分析 | 第84-86页 |
| 5.1.7 抗氧化酶活力测定 | 第86-88页 |
| 5.1.8 统计学分析 | 第88页 |
| 5.2 结果 | 第88-103页 |
| 5.2.1 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核脂质过氧化水平的影响 | 第88-89页 |
| 5.2.2 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核清除DPPH自由基能力的影响 | 第89-91页 |
| 5.2.3 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核中总酚含量的影响 | 第91-93页 |
| 5.2.4 氧胁迫对汤姆青霉菌核还原能力的影响 | 第93-94页 |
| 5.2.5 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核亚铁离子螯合作用的影响 | 第94-96页 |
| 5.2.6 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核SOD活力影响 | 第96-97页 |
| 5.2.7 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株CAT活力影响 | 第97-99页 |
| 5.2.8 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株POD活力影响 | 第99-101页 |
| 5.2.9 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株GPX活力影响 | 第101-103页 |
| 5.3 讨论 | 第103-105页 |
| 5.4 小结 | 第105-106页 |
| 参考文献 | 第106-110页 |
| 第六章 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株AsA-GSH循环的影响 | 第110-132页 |
| 6.1 材料与方法 | 第110-113页 |
| 6.1.1 菌株 | 第110页 |
| 6.1.2 主要仪器 | 第110-111页 |
| 6.1.3 试剂 | 第111页 |
| 6.1.4 培养方法 | 第111页 |
| 6.1.5 抗坏血酸含量测定 | 第111-112页 |
| 6.1.6 氧化型/还原型谷胱甘肽含量测定 | 第112页 |
| 6.1.7 酶液提取 | 第112-113页 |
| 6.1.8 统计学分析 | 第113页 |
| 6.2 结果 | 第113-126页 |
| 6.2.1 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核中抗坏血酸含量的影响 | 第113-116页 |
| 6.2.2 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核中谷胱甘肽含量的影响 | 第116-119页 |
| 6.2.3 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核中APX活力的影响 | 第119-120页 |
| 6.2.4 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核中GR活力影响 | 第120-122页 |
| 6.2.5 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核中MDHAR活力影响 | 第122-124页 |
| 6.2.6 氧胁迫对汤姆青霉PT95和Q1菌株菌核中DHAR活力影响 | 第124-126页 |
| 6.3 讨论 | 第126-128页 |
| 6.4 小结 | 第128页 |
| 参考文献 | 第128-132页 |
| 第七章 全文总结与展望 | 第132-134页 |
| 学位论文创新点 | 第134-135页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第135-136页 |
| 致谢 | 第136-137页 |
| 个人简况及联系方式 | 第137-139页 |
