小檗碱对DSS结肠炎小鼠保护作用的研究
摘要 | 第7-11页 |
ABSTRACT | 第11-15页 |
引言 | 第16-18页 |
实验流程图 | 第17-18页 |
实验一 小檗碱在整体水平对DSS结肠炎小鼠的影响 | 第18-24页 |
1 实验材料 | 第18页 |
1.1 试剂 | 第18页 |
1.2 仪器 | 第18页 |
1.3 实验动物 | 第18页 |
2 实验方法 | 第18-20页 |
2.1 药物的配制方法 | 第18页 |
2.2 动物模型的制备 | 第18-19页 |
2.3 动物分组及给药 | 第19页 |
2.4 指标观察 | 第19-20页 |
2.4.1 打分评价 | 第20页 |
2.4.2 疾病活动指数 | 第20页 |
2.5 数据处理 | 第20页 |
3 实验结果 | 第20-23页 |
3.1 体重的变化 | 第20-21页 |
3.2 便溏情况 | 第21-22页 |
3.3 肛门出血情况 | 第22页 |
3.4 疾病活动指数 | 第22-23页 |
4 结论与讨论 | 第23-24页 |
实验二 小檗碱在组织水平对DSS结肠炎小鼠的影响 | 第24-29页 |
1 实验材料 | 第24页 |
1.1 试剂 | 第24页 |
1.2 仪器 | 第24页 |
1.3 实验动物 | 第24页 |
2 实验方法 | 第24-26页 |
2.1 药物的配制方法 | 第24页 |
2.2 动物模型的制备 | 第24页 |
2.3 动物分组及给药 | 第24-25页 |
2.4 结肠组织形态变化 | 第25页 |
2.5 结肠组织HE染色 | 第25-26页 |
2.5.1 取材 | 第25页 |
2.5.2 石蜡包埋 | 第25页 |
2.5.3 石蜡组织切片 | 第25-26页 |
3 实验结果 | 第26-28页 |
3.1 结肠组织形态的变化结果 | 第26-27页 |
3.2 结肠组织HE染色情况 | 第27-28页 |
4 讨论与结论 | 第28-29页 |
实验三 小檗碱在细胞水平对DSS结肠炎小鼠的影响 | 第29-35页 |
1 流式细胞术检测肠道炎性细胞的比例 | 第29-32页 |
1.1 实验材料 | 第29页 |
1.1.1 试剂 | 第29页 |
1.1.2 仪器 | 第29页 |
1.1.3 实验动物 | 第29页 |
1.2 实验方法 | 第29-30页 |
1.2.1 药物的配制方法 | 第29-30页 |
1.2.2 动物模型的制备 | 第30页 |
1.2.3 动物分组及给药 | 第30页 |
1.3 肠道固有层细胞LPMC分离 | 第30-31页 |
1.4 流式细胞分析仪检测炎性细胞比例 | 第31页 |
1.5 实验结果 | 第31-32页 |
2 检测肠道菌落数的多少 | 第32-34页 |
2.1 实验材料 | 第32页 |
2.1.1 试剂 | 第32页 |
2.1.2 仪器 | 第32页 |
2.1.3 实验动物 | 第32页 |
2.2 实验方法 | 第32-33页 |
2.2.1 药物的配制方法 | 第32页 |
2.2.2 动物模型的制备 | 第32页 |
2.2.3 动物分组及给药 | 第32-33页 |
2.3 肠道菌落数检测 | 第33-34页 |
2.4 实验结果 | 第34页 |
3 讨论与结论 | 第34-35页 |
实验四 小檗碱在分子水平对DSS结肠炎小鼠的影响 | 第35-40页 |
1 实验材料 | 第35-36页 |
1.1 试剂 | 第35-36页 |
1.2 仪器 | 第36页 |
1.3 实验动物 | 第36页 |
2 实验方法 | 第36-38页 |
2.1 药物的配制方法 | 第36页 |
2.2 动物模型的制备 | 第36页 |
2.3 动物分组及给药 | 第36页 |
2.4 结肠组织RNA的提取 | 第36-37页 |
2.5 反转录和Q-PCR | 第37-38页 |
2.6 数据处理 | 第38页 |
3 实验结果 | 第38-39页 |
4 结论与讨论 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-45页 |
综述 | 第45-50页 |
参考文献 | 第48-50页 |
致谢 | 第50-51页 |
附录一:缩写词中英文对照表 | 第51-52页 |
附录二:试剂配方 | 第52-54页 |
附录三:在读硕士期间的科研情况 | 第54页 |