| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-22页 |
| 研究现状、成果 | 第15-21页 |
| 研究目的、方法 | 第21-22页 |
| 一、VEGF对视网膜血管白细胞瘀滞影响及继发可逆性视网膜血管闭塞发生 | 第22-50页 |
| 1.1 对象和方法 | 第22-29页 |
| 1.1.1 对象 | 第22-25页 |
| 1.1.2 方法 | 第25-29页 |
| 1.2 结果 | 第29-42页 |
| 1.2.1 玻璃体腔注射 1μg VEGF可诱发短暂性视网膜血管白细胞瘀滞发生 | 第29-30页 |
| 1.2.2 玻璃体腔注射不同浓度VEGF视网膜血管白细胞瘀滞情况 | 第30-32页 |
| 1.2.3 Tet/opsin/VEGF视网膜血管内白细胞瘀滞情况 | 第32-33页 |
| 1.2.4 Rho/VEGF视网膜血管内白细胞瘀滞情况 | 第33-35页 |
| 1.2.5 眼底荧光素钠血管造影 | 第35-37页 |
| 1.2.6 Hypoxyprobe视网膜染色 | 第37-39页 |
| 1.2.7 Tet/opsin/VEGF双转基因鼠关闭VEGF表达后视网膜白细胞瘀滞及眼底血管造影情况 | 第39-40页 |
| 1.2.8 Eylea中和VEGF转基因鼠VEGF表达后眼底血管造影及白细胞黏附情况 | 第40-42页 |
| 1.3 讨论 | 第42-49页 |
| 1.4 小结 | 第49-50页 |
| 二、VEGF激活HRECs促进白细胞黏附发生 | 第50-65页 |
| 2.1 实验对象、主要仪器与试剂 | 第50-52页 |
| 2.2 实验方法 | 第52-60页 |
| 2.2.1 HREC培养 | 第52页 |
| 2.2.2 qRT-PCR检测VEGF刺激后HREC黏附分子改变 | 第52-57页 |
| 2.2.3 细胞免疫荧光检测VCAM-1 表达 | 第57-58页 |
| 2.2.4 NF-κB转录活性检测 | 第58-60页 |
| 2.3 实验结果 | 第60-62页 |
| 2.3.1 VEGF刺激HRECs黏附分子RNA水平表达 | 第60页 |
| 2.3.2 VEGF刺激MRECs黏附分子VCAM-1 蛋白水平表达 | 第60-61页 |
| 2.3.3 VEGF刺激HRECs后NF-κB转录活性表达 | 第61-62页 |
| 2.4 讨论 | 第62-64页 |
| 2.5 小结 | 第64-65页 |
| 三、VEGF诱发视网膜白细胞瘀滞机制的研究 | 第65-90页 |
| 3.1 对象和方法 | 第65-77页 |
| 3.1.1 对象 | 第65-68页 |
| 3.1.2 方法 | 第68-77页 |
| 3.2 结果 | 第77-83页 |
| 3.2.1 视网膜黏附分子mRNA表达 | 第77-78页 |
| 3.2.2 视网膜VCAM-1 蛋白水平表达 | 第78-80页 |
| 3.2.3 视网膜NF-κB转录活性检测 | 第80-81页 |
| 3.2.4 视网膜白细胞黏附中白细胞亚型检测 | 第81-82页 |
| 3.2.5 VEGFR或者VCAM-1 阻断后对视网膜血管白细胞黏附的影响 | 第82-83页 |
| 3.3 讨论 | 第83-89页 |
| 3.4 小结 | 第89-90页 |
| 全文结论 | 第90-91页 |
| 论文创新点 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-103页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第103-104页 |
| 综述 糖尿病视网膜病变中白细胞瘀滞发生的机制与作用 | 第104-119页 |
| 综述参考文献 | 第112-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
| 个人简历 | 第120页 |
