| 缩写词 | 第13-14页 |
| 摘要 | 第14-19页 |
| Abstract | 第19-23页 |
| 第一章 引言 | 第24-33页 |
| 1 植物次生代谢物质 | 第24-28页 |
| 1.1 植物类黄酮化合物 | 第25-27页 |
| 1.1.1 植物类黄酮化合物的生物合成与基因调控 | 第25-26页 |
| 1.1.2 植物类黄酮化合物的功能活性 | 第26-27页 |
| 1.2 植物类胡萝卜素 | 第27-28页 |
| 1.2.1 植物类胡萝卜素化合物的生物合成和基因调控 | 第27-28页 |
| 1.2.2 植物类胡萝卜素化合物的功能活性 | 第28页 |
| 2 龙眼次生代谢研究进展 | 第28-29页 |
| 3 逆境胁迫与植物次生代谢 | 第29-30页 |
| 3.1 温度与植物次生代谢 | 第29-30页 |
| 3.2 水杨酸与植物次生代谢 | 第30页 |
| 4 本研究主要意义和内容 | 第30-33页 |
| 第二章 龙眼胚性愈伤组织培养条件的优化 | 第33-43页 |
| 第一节 培养时间龙眼胚性愈伤组织生长的影响 | 第33-36页 |
| 1 材料与方法 | 第33-34页 |
| 1.1 材料 | 第33页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第33-34页 |
| 1.3 数据分析 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-35页 |
| 2.1 培养时间对龙眼胚性愈伤组织外观形态的影响 | 第34页 |
| 2.2 培养时间对龙眼胚性愈伤组织生长的影响 | 第34-35页 |
| 2.3 培养时间对龙眼胚性愈伤组织增殖系数的影响 | 第35页 |
| 3 讨论 | 第35-36页 |
| 第二节 温度对龙眼胚性愈伤组织增殖的影响 | 第36-39页 |
| 1 材料与方法 | 第36-37页 |
| 1.1 材料 | 第36页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第36页 |
| 1.3 计算方法和数据分析 | 第36-37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-39页 |
| 2.1 培养温度对龙眼胚性愈伤组织生长的影响 | 第37-38页 |
| 2.1.1 恒温培养对龙眼胚性愈伤组织生长的影响 | 第37页 |
| 2.1.2 变温培养对龙眼胚性愈伤组织生长的影响 | 第37-38页 |
| 2.2 培养温度对龙眼胚性愈伤组织增殖系数的影响 | 第38-39页 |
| 2.2.1 恒温培养对龙眼胚性愈伤组织增殖系数的影响 | 第38页 |
| 2.2.2 变温培养对龙眼胚性愈伤组织增殖系数的影响 | 第38-39页 |
| 3 讨论 | 第39页 |
| 第三节 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织增殖的影响 | 第39-43页 |
| 1 材料与方法 | 第39-40页 |
| 1.1 材料 | 第39-40页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第40页 |
| 1.3 计算方法和数据分析 | 第40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-42页 |
| 2.1 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织生长的影响 | 第40-41页 |
| 2.2 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织增殖系数的影响 | 第41-42页 |
| 3 讨论 | 第42-43页 |
| 第三章 培养温度和SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮与类胡萝卜素积累的影响 | 第43-59页 |
| 第一节 龙眼胚性愈伤组织类胡萝卜素提取方法的优化 | 第43-48页 |
| 1 材料与方法 | 第44-45页 |
| 1.1 材料 | 第44页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第44页 |
| 1.3 数据分析 | 第44页 |
| 1.4 类胡萝卜素测定方法优化 | 第44-45页 |
| 1.4.1 提取试剂的优化 | 第44-45页 |
| 1.4.2 提取时间的优化 | 第45页 |
| 1.4.3 料液比的优化 | 第45页 |
| 1.4.4 盐酸浓度的优化 | 第45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-47页 |
| 2.1 酸热法提取类胡萝卜素提取试剂的优化 | 第45-46页 |
| 2.2 酸热法提取类胡萝卜素提取时间的优化 | 第46页 |
| 2.3 酸热法提取类胡萝卜素料液比的优化 | 第46-47页 |
| 2.4 酸热法提取类胡萝卜素盐酸浓度的优化 | 第47页 |
| 3 讨论 | 第47-48页 |
| 第二节 培养时间对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮和类胡萝卜素积累的影响 | 第48-51页 |
| 1 材料与方法 | 第48-49页 |
| 1.1 材料 | 第48页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第48-49页 |
| 1.3 类黄酮含量的测定 | 第49页 |
| 1.4 类胡萝卜素含量的测定 | 第49页 |
| 1.5 数据分析 | 第49页 |
| 2 结果与分析 | 第49-50页 |
| 2.1 培养时间对龙眼胚性愈伤中类黄酮积累的影响 | 第49-50页 |
| 2.2 培养时间对龙眼胚性愈伤中类胡萝卜素积累的影响 | 第50页 |
| 3 讨论 | 第50-51页 |
| 第三节 培养温度对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮和类胡萝卜素积累的影响 | 第51-55页 |
| 1 材料与方法 | 第51-52页 |
| 1.1 材料 | 第51页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第51页 |
| 1.3 类黄酮含量测定 | 第51-52页 |
| 1.4 类胡萝卜含量测定 | 第52页 |
| 1.5 数据分析 | 第52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-55页 |
| 2.1 培养温度对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮积累的影响 | 第52-53页 |
| 2.1.1 恒温培养对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮积累的影响 | 第52-53页 |
| 2.1.2 变温培养对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮积累的影响 | 第53页 |
| 2.2 培养温度对龙眼胚性愈伤组织中类胡萝卜素积累的影响 | 第53-55页 |
| 2.2.1 恒温培养对龙眼胚性愈伤组织中类胡萝卜素积累的影响 | 第53-54页 |
| 2.2.2 变温培养对龙眼胚性愈伤组织中类胡萝卜素积累的影响 | 第54-55页 |
| 3 讨论 | 第55页 |
| 第四节 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮和类胡萝卜素积累的影响 | 第55-59页 |
| 1 材料与方法 | 第55-56页 |
| 1.1 材料 | 第55页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第55页 |
| 1.3 类黄酮含量测定 | 第55-56页 |
| 1.4 类胡萝卜含量测定 | 第56页 |
| 1.5 数据分析 | 第56页 |
| 2 结果与分析 | 第56-57页 |
| 2.1 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮积累的影响 | 第56-57页 |
| 2.2 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中类胡萝卜素积累的影响 | 第57页 |
| 3 讨论 | 第57-59页 |
| 第四章 温度与SA对龙眼胚性悬浮细胞中类黄酮和类胡萝卜素积累的影响 | 第59-65页 |
| 第一节 SA添加时间对龙眼胚性悬浮细胞中类黄酮和类胡萝卜素积累的影响 | 第59-62页 |
| 1 材料与方法 | 第59-60页 |
| 1.1 材料 | 第59页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第59-60页 |
| 1.3 类黄酮含量测定 | 第60页 |
| 1.4 类胡萝卜含量测定 | 第60页 |
| 1.5 数据分析 | 第60页 |
| 2 结果与分析 | 第60-61页 |
| 2.1 SA添加时间对龙眼胚性悬浮细胞中类黄酮积累的影响 | 第60-61页 |
| 2.2 SA添加时间对龙眼胚性悬浮细胞类胡萝卜素积累量的影响 | 第61页 |
| 3 讨论 | 第61-62页 |
| 第二节 温度与SA对龙眼胚性悬浮细胞中类黄酮和类胡萝卜素积累的影响 | 第62-65页 |
| 1 材料与方法 | 第62-63页 |
| 1.1 材料 | 第62页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第62页 |
| 1.3 类黄酮含量测定 | 第62页 |
| 1.4 类胡萝卜含量测定 | 第62-63页 |
| 1.5 数据分析 | 第63页 |
| 2 结果与分析 | 第63页 |
| 3 讨论 | 第63-65页 |
| 第五章 培养温度与SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中细胞保护酶活性的影响 | 第65-74页 |
| 第一节 培养温度对龙眼胚性愈伤组织中细胞保护酶活性的影响 | 第66-70页 |
| 1 材料与方法 | 第66-67页 |
| 1.1 材料 | 第66页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第66页 |
| 1.3 SOD酶活性测定方法 | 第66页 |
| 1.4 POD酶活性测定方法 | 第66-67页 |
| 1.5 CAT酶活性测定方法 | 第67页 |
| 1.6 数据分析 | 第67页 |
| 2 结果与分析 | 第67-69页 |
| 2.1 培养温度对龙眼胚性愈伤组织中SOD酶活性的变化 | 第67-68页 |
| 2.2 培养温度对龙眼胚性愈伤组织中POD酶活性的变化 | 第68页 |
| 2.3 培养温度对龙眼胚性愈伤组织中CAT酶活性的变化 | 第68-69页 |
| 3 讨论 | 第69-70页 |
| 第二节 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中细胞保护酶活性的影响 | 第70-74页 |
| 1 材料与方法 | 第70-71页 |
| 1.1 材料 | 第70页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第70页 |
| 1.3 SOD酶活性测定方法 | 第70页 |
| 1.4 POD酶活性测定方法 | 第70页 |
| 1.5 CAT酶活性测定方法 | 第70-71页 |
| 1.6 数据分析 | 第71页 |
| 2 结果与分析 | 第71-73页 |
| 2.1 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中SOD酶活性的影响 | 第71页 |
| 2.2 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中POD酶活性的影响 | 第71-72页 |
| 2.3 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中CAT酶活性的影响 | 第72-73页 |
| 3 讨论 | 第73-74页 |
| 第六章 温度与SA对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮和类胡萝卜素合成相关基因表达的影响 | 第74-101页 |
| 第一节 温度对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮和类胡萝卜素合成相关基因表达的影响 | 第74-84页 |
| 1 材料与方法 | 第74-75页 |
| 1.1 材料 | 第74页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第74-75页 |
| 1.3 龙眼胚性愈伤总RNA的提取与检测 | 第75页 |
| 1.4 cDNA的合成 | 第75页 |
| 1.5 qPCR引物设计及分析 | 第75页 |
| 1.6 数据分析 | 第75页 |
| 2 结果与分析 | 第75-83页 |
| 2.1 温度对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮相关基因表达的影响 | 第75-79页 |
| 2.1.1 温度对龙眼胚性愈伤组织中CHS基因表达的影响 | 第76页 |
| 2.1.2 温度对龙眼胚性愈伤组织中CHI基因表达的影响 | 第76-77页 |
| 2.1.3 温度对龙眼胚性愈伤组织中F3H基因表达的影响 | 第77-78页 |
| 2.1.4 温度对龙眼胚性愈伤组织中DFR基因表达的影响 | 第78-79页 |
| 2.2 温度对龙眼胚性愈伤中类胡萝卜素相关基因表达的影响 | 第79-83页 |
| 2.2.1 温度对龙眼胚性愈伤组织中GGPS基因表达的影响 | 第79-80页 |
| 2.2.2 温度对龙眼胚性愈伤组织中PSY基因表达的影响 | 第80-81页 |
| 2.2.3 温度对龙眼胚性愈伤组织中PDS基因表达的影响 | 第81-82页 |
| 2.2.4 温度对龙眼胚性愈伤组织中ZDS基因表达的影响 | 第82-83页 |
| 3 讨论 | 第83-84页 |
| 3.1 温度对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮合成相关基因具有调控作用 | 第83-84页 |
| 3.2 温度对龙眼胚性愈伤组织中胡萝卜素合成相关基因具有调控作用 | 第84页 |
| 第二节 优化的温度条件下对不同生长阶段的龙眼胚性愈伤组织中类黄酮和类胡萝素合成相关基因表达分析 | 第84-89页 |
| 1 材料与方法 | 第84-85页 |
| 1.1 材料 | 第84页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第84-85页 |
| 1.3 龙眼胚性愈伤总RNA的提取与检测 | 第85页 |
| 1.4 qPCR引物设计及分析 | 第85页 |
| 1.5 数据分析 | 第85页 |
| 2 结果与分析 | 第85-88页 |
| 2.1 温度对不同生长阶段的龙眼胚性愈伤组织中类黄酮相关基因表达的影响 | 第85-86页 |
| 2.2 温度对不同生长阶段的龙眼胚性愈伤组织中类胡萝卜素相关基因表达的影响 | 第86-88页 |
| 3 讨论 | 第88-89页 |
| 3.1 温度对不同生长阶段类黄酮相关基因表达的相关性分析 | 第88页 |
| 3.2 温度对不同生长阶段类胡萝卜素相关基因表达的相关性分析 | 第88-89页 |
| 第三节 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮和类胡萝卜素合成相关基因表达的影响 | 第89-96页 |
| 1 材料与方法 | 第89-90页 |
| 1.1 材料 | 第89页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第89页 |
| 1.3 龙眼胚性愈伤总RNA的提取与检测及cDNA的合成 | 第89页 |
| 1.4 qPCR引物设计及分析 | 第89页 |
| 1.5 数据分析 | 第89-90页 |
| 2 结果与分析 | 第90-95页 |
| 2.1 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮相关基因表达的影响 | 第90-92页 |
| 2.1.1 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中CHS基因表达的影响 | 第90页 |
| 2.1.2 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中CHI基因表达的影响 | 第90-91页 |
| 2.1.3 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中F3H基因表达的影响 | 第91页 |
| 2.1.4 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中DFR基因表达的影响 | 第91-92页 |
| 2.2 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中类胡萝卜素相关基因表达的影响 | 第92-95页 |
| 2.2.1 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中GGPS基因表达的影响 | 第92-93页 |
| 2.2.2 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中PSY基因表达的影响 | 第93-94页 |
| 2.2.3 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中PDS基因表达的影响 | 第94页 |
| 2.2.4 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中ZDS基因表达的影响 | 第94-95页 |
| 3 讨论 | 第95-96页 |
| 3.1 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中类黄酮合成相关基因的影响 | 第95页 |
| 3.2 SA浓度对龙眼胚性愈伤组织中类胡萝卜素合成相关基因的影响 | 第95-96页 |
| 第四节 优化的SA浓度下对不同生长阶段的龙眼胚性愈伤组织中类黄酮和类胡萝卜素合成相关基因表达分析 | 第96-101页 |
| 1 材料与方法 | 第96-97页 |
| 1.1 材料 | 第96页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第96页 |
| 1.3 龙眼胚性愈伤总RNA的提取与检测及cDNA的合成 | 第96页 |
| 1.4 qPCR引物设计及分析 | 第96-97页 |
| 1.5 数据分析 | 第97页 |
| 2 结果与分析 | 第97-99页 |
| 2.1 SA对不同生长阶段的龙眼胚性愈伤组织中类黄酮相关基因表达的影响 | 第97-98页 |
| 2.2 SA对不同生长阶段的龙眼胚性愈伤组织中胡萝卜素相关基因表达的影响 | 第98-99页 |
| 3 讨论 | 第99-101页 |
| 3.1 SA对龙眼胚性愈伤不同生长阶段类黄酮基因表达相关性分析 | 第99-100页 |
| 3.2 SA对龙眼胚性愈伤不同生长阶段类胡萝卜素基因表达相关性分析 | 第100-101页 |
| 第七章 温度与SA对龙眼胚性悬浮细胞中类黄酮和类胡萝卜素合成相关基因的表达分析 | 第101-107页 |
| 第一节 温度与SA对龙眼胚性悬浮细胞中类黄酮和类胡萝卜素合成相关基因的表达分析 | 第101-107页 |
| 1 材料与方法 | 第101-102页 |
| 1.1 材料 | 第101页 |
| 1.2 材料培养与处理 | 第101-102页 |
| 1.3 龙眼胚性悬浮细胞总RNA的提取与检测 | 第102页 |
| 1.4 cDNA的合成 | 第102页 |
| 1.5 qPCR引物设计及分析 | 第102页 |
| 1.6 数据分析 | 第102页 |
| 2 结果与分析 | 第102-105页 |
| 2.1 温度与SA对龙眼胚性悬浮细胞中类黄酮相关基因表达的影响 | 第102-104页 |
| 2.2 温度与SA对龙眼悬浮细胞中类胡萝卜素相关基因表达的影响 | 第104-105页 |
| 3 讨论 | 第105-107页 |
| 3.1 温度与SA对不同生长阶段的龙眼胚性悬浮细胞中类黄酮基因表达的相关性分析 | 第105-106页 |
| 3.2 温度与SA对不同生长阶段的龙眼胚性悬浮细胞中类胡萝卜素基因表达的相关性分析 | 第106-107页 |
| 第八章 小结与展望 | 第107-109页 |
| 1 小结 | 第107-108页 |
| 2 展望 | 第108-109页 |
| 参考文献 | 第109-118页 |
| 附录A 本研究使用的基因序列 | 第118-126页 |
| 附录B 本研究使用引物及相关信息 | 第126-127页 |
| 附录C 图版说明 | 第127-130页 |
| 附录D 图版 | 第130-139页 |
| 致谢 | 第139页 |
