| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 符号说明 | 第10-15页 |
| 1 文献综述 | 第15-30页 |
| 1.1 高血压与ACE抑制肽 | 第15-17页 |
| 1.2 ACE抑制肽的来源 | 第17-21页 |
| 1.3 乳源ACE抑制肽制备研究进展 | 第21-28页 |
| 1.3.1 酶解制备乳源ACE抑制肽 | 第21-24页 |
| 1.3.2 微生物发酵制备乳源ACE抑制肽 | 第24-28页 |
| 1.4 研究意义及内容 | 第28-30页 |
| 2 发酵羊乳产ACE抑制肽益生乳杆菌的筛选及鉴定 | 第30-41页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 材料与方法 | 第30-34页 |
| 2.2.1 菌种 | 第30页 |
| 2.2.2 原料及培养基 | 第30页 |
| 2.2.3 主要试剂 | 第30-31页 |
| 2.2.4 仪器及设备 | 第31-32页 |
| 2.2.5 菌种活化 | 第32页 |
| 2.2.6 发酵羊乳中ACE抑制活性测定 | 第32页 |
| 2.2.7 产ACE抑制肽益生乳杆菌的筛选 | 第32页 |
| 2.2.8 菌种 16S r DNA鉴定 | 第32-33页 |
| 2.2.9 模拟胃肠液试验 | 第33页 |
| 2.2.10 p H值测定 | 第33页 |
| 2.2.11 发酵羊乳的感官评价 | 第33-34页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第34-40页 |
| 2.3.1 发酵羊乳产ACE抑制肽益生乳杆菌的筛选 | 第34-35页 |
| 2.3.2 产ACE抑制肽菌株的 16S r DNA鉴定 | 第35-37页 |
| 2.3.3 高产ACE抑制肽菌株发酵羊乳的模拟胃肠液试验 | 第37-40页 |
| 2.4 小结 | 第40-41页 |
| 3 保加利亚乳杆菌LB6发酵羊乳产ACE抑制肽的研究 | 第41-67页 |
| 3.1 引言 | 第41页 |
| 3.2 材料与方法 | 第41-42页 |
| 3.2.1 主要原料和试剂 | 第41页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第41页 |
| 3.2.3 保加利亚乳杆菌LB6生长及产ACE抑制肽曲线测定 | 第41-42页 |
| 3.2.4 产肽条件及培养基优化 | 第42页 |
| 3.2.5 活菌数测定 | 第42页 |
| 3.2.6 酸度测定 | 第42页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第42-66页 |
| 3.3.1 保加利亚乳杆菌LB6的生长及产肽曲线 | 第42-43页 |
| 3.3.2 产肽条件对保加利亚乳杆菌LB6发酵羊乳ACE抑制率的影响 | 第43-48页 |
| 3.3.3 保加利亚乳杆菌LB6发酵羊乳产肽条件主因子筛选 | 第48-51页 |
| 3.3.4 响应面法优化保加利亚乳杆菌LB6产肽条件 | 第51-55页 |
| 3.3.5 碳氮源等对保加利亚乳杆菌LB6发酵羊乳产ACE抑制肽的影响 | 第55-61页 |
| 3.3.6 保加利亚乳杆菌LB6产ACE抑制肽培养基优化 | 第61-66页 |
| 3.4 小结 | 第66-67页 |
| 4 植物乳杆菌LP69发酵羊乳产ACE抑制肽的研究 | 第67-91页 |
| 4.1 引言 | 第67页 |
| 4.2 材料与方法 | 第67页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第67-90页 |
| 4.3.1 植物乳杆菌LP69生长及产肽曲线 | 第67-68页 |
| 4.3.2 营养物对植物乳杆菌LP69发酵羊乳产肽的影响 | 第68-73页 |
| 4.3.3 植物乳杆菌LP69产肽培养基主因素筛选 | 第73-75页 |
| 4.3.4 植物乳杆菌LP69产肽培养基优化 | 第75-77页 |
| 4.3.5 产肽条件对植物乳杆菌LP69发酵羊乳ACE抑制率的影响 | 第77-83页 |
| 4.3.6 植物乳杆菌LP69产肽条件主因素筛选及优化 | 第83-88页 |
| 4.3.7 发酵羊乳中的肽含量及ACE抑制率比较 | 第88-90页 |
| 4.4 小结 | 第90-91页 |
| 5 酶解羊乳酪蛋白制备ACE抑制肽的研究 | 第91-110页 |
| 5.1 引言 | 第91页 |
| 5.2 材料与方法 | 第91-92页 |
| 5.2.1 原料及试剂 | 第91页 |
| 5.2.2 主要仪器仪器设备 | 第91页 |
| 5.2.3 羊乳酪蛋白制备 | 第91页 |
| 5.2.4 蛋白酶筛选 | 第91-92页 |
| 5.2.5 酶解条件优化 | 第92页 |
| 5.2.6 多肽测定 | 第92页 |
| 5.2.7 羊乳酪蛋白水解度测定 | 第92页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第92-109页 |
| 5.3.1 羊乳酪蛋白水解酶的筛选 | 第92-94页 |
| 5.3.2 各因素对Alcalase水解羊乳酪蛋白制备ACE抑制肽的影响 | 第94-96页 |
| 5.3.3 Alcalase水解羊乳酪蛋白制备ACE抑制肽主因素的筛选 | 第96-97页 |
| 5.3.4 Alcalase酶解羊乳酪蛋白制备ACE抑制肽工艺优化 | 第97-100页 |
| 5.3.5 各因素对双酶水解羊乳酪蛋白产ACE抑制肽的影响 | 第100-103页 |
| 5.3.6 Alcalase及胰蛋白酶水解羊乳酪蛋白制备ACE抑制肽主因素的筛选 | 第103-104页 |
| 5.3.7 双酶水解羊乳酪蛋白制备ACE抑制肽工艺优化 | 第104-108页 |
| 5.3.8 Alcalase酶解羊乳酪蛋白制备ACE抑制肽的反应动力学 | 第108-109页 |
| 5.3.9 双酶水解羊乳酪蛋白制备ACE抑制肽的反应动力学 | 第109页 |
| 5.4 小结 | 第109-110页 |
| 6 羊乳源ACE抑制肽的分离纯化与鉴定 | 第110-127页 |
| 6.1 引言 | 第110页 |
| 6.2 材料与方法 | 第110-112页 |
| 6.2.1 原料及试剂 | 第110-111页 |
| 6.2.2 主要仪器设备 | 第111页 |
| 6.2.3 ACE抑制肽粗品的制备及IC50值的测定 | 第111页 |
| 6.2.4 羊乳源ACE抑制肽的超滤分离 | 第111页 |
| 6.2.5 大孔树脂脱盐 | 第111页 |
| 6.2.6 凝胶色谱分离ACE抑制肽 | 第111-112页 |
| 6.2.7 半制备RP-HPLC纯化ACE抑制肽 | 第112页 |
| 6.2.8 MALDI/TOF-TOF-MS/MS鉴定ACE抑制肽 | 第112页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第112-126页 |
| 6.3.1 超滤截断分子量对组分ACE抑制活性的影响 | 第112-113页 |
| 6.3.2 凝胶色谱分离纯化羊乳源ACE抑制肽 | 第113-119页 |
| 6.3.3 RP-HPLC分离纯化羊乳源ACE抑制肽 | 第119-121页 |
| 6.3.4 羊乳源ACE抑制肽鉴定 | 第121-126页 |
| 6.4 小结 | 第126-127页 |
| 7 结论与展望 | 第127-129页 |
| 7.1 结论 | 第127-128页 |
| 7.2 创新点 | 第128页 |
| 7.3 后续工作 | 第128-129页 |
| 致谢 | 第129-130页 |
| 参考文献 | 第130-148页 |
| 附录A：徳氏乳杆菌保加利亚亚种LB6的 16S r DNA基因序列 | 第148-151页 |
| 附录B：鼠李糖乳杆菌LR22的 16S r DNA基因序列 | 第151-154页 |
| 附录C：罗伊氏乳杆菌LT33的 16S r DNA基因序列 | 第154-157页 |
| 附录D：植物乳杆菌LP69的 16S r DNA基因序列 | 第157-160页 |
| 攻读学位期间取得的成果 | 第160-162页 |
