摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
前言 | 第11-15页 |
1. 实验材料 | 第15-21页 |
·相关感受态和细胞 | 第15页 |
·实验相关工具酶和抗体 | 第15页 |
·引物 | 第15-16页 |
·所用溶液和培养基 | 第16-18页 |
·相关试剂盒 | 第18页 |
·实验相关多肽 | 第18-19页 |
·主要仪器 | 第19-21页 |
2. 实验方法 | 第21-27页 |
·针对HIV-1 Env gp41蛋白上E49、L57两位点氨基酸突变频率的统计 | 第21页 |
·以标准实验株HIVNL4-3的Env质粒为模板进行氨基酸定点突变 | 第21-22页 |
·Western Blot检测Env的表达情况 | 第22-23页 |
·Capture ELISA检测Env的表达情况 | 第23-24页 |
·假病毒的包装制备 | 第24页 |
·功能性假病毒的滴度测定 | 第24-25页 |
·假病毒的p24抗原定量 | 第25页 |
·HIV-1突变假病毒定量单次入侵实验 | 第25页 |
·多肽对HIV-1假病毒的抑制率的检测 | 第25-26页 |
·用圆二色谱仪检测突变对N肽α螺旋形成和螺旋稳定性的影响 | 第26-27页 |
3. 实验结果 | 第27-39页 |
·E49和L57两位点氨基酸突变频率的统计结果 | 第27-30页 |
·点突变后HIV-1 Env的表达情况 | 第30页 |
·突变位点对假毒株入侵靶细胞能力的影响 | 第30-32页 |
·短肽类抑制剂对突变假毒株的抑制情况 | 第32-34页 |
·突变假毒株对第一代和新一代膜融合抑制剂的耐药性检测 | 第34-36页 |
·点突变后对N肽类抑制剂抗病毒活性的影响 | 第36-37页 |
·CD检测突变点对NHR螺旋稳定性的影响 | 第37-39页 |
4. 讨论 | 第39-45页 |
5. 小结 | 第45-47页 |
参考文献 | 第47-53页 |
综述 | 第53-65页 |
二、前言 | 第53-54页 |
三、针对HIV-1 gp41的膜融合抑制剂的抗病毒机制 | 第54-55页 |
四、N肽类膜融合抑制剂 | 第55-56页 |
1. 源于NHR序列的N肽类膜融合抑制剂 | 第55页 |
2. 重组嵌合体N肽类膜融合抑制剂 | 第55-56页 |
五、C肽类膜融合抑制剂 | 第56-60页 |
1. 源于CHR序列的C肽类膜融合抑制剂 | 第56-57页 |
2. 改造的C肽类膜融合抑制剂 | 第57-60页 |
六、总结 | 第60页 |
参考文献 | 第60-65页 |
附录 | 第65-71页 |
致谢 | 第71-73页 |
个人简历 | 第73页 |