攻读学位期间发表的论文 | 第1-9页 |
中文摘要 | 第9-12页 |
ABSTRACT | 第12-14页 |
前言 | 第14-33页 |
1 心血管疾病综述 | 第14-20页 |
·心血管疾病的危害及其发病机理 | 第14页 |
·治疗心血管疾病的药物 | 第14-17页 |
·β阻断剂 | 第14-15页 |
·钙通道阻滞剂 | 第15页 |
·血管紧张素转化酶(ACE)抑制剂组合 | 第15-16页 |
·血管紧张素 II 受体拮抗剂组合 | 第16页 |
·抗血栓药物 | 第16-17页 |
·抗血小板药物研究近况 | 第17-20页 |
·抗血小板药物的分类 | 第17-18页 |
·糖蛋白 IIb/IIIa 抑制剂类 | 第17页 |
·ADP 受体/P2Y12抑制剂类 | 第17页 |
·COX 抑制剂 | 第17页 |
·磷酸二酯酶抑制药 | 第17-18页 |
·凝血酶受体拮抗剂 | 第18页 |
·抗血小板聚集新药 | 第18-20页 |
2 潜在新药 SU2237 的概述 | 第20-21页 |
·SU2237 的基本物化参数 | 第21页 |
·SU2237 的体内药动学研究 | 第21页 |
3 口服药物肠道吸收的研究方法综述 | 第21-24页 |
·在体法 | 第22页 |
·离体法 | 第22-23页 |
·外翻肠囊法 | 第22-23页 |
·分离肠黏膜法 | 第23页 |
·体外法 | 第23-24页 |
·Caco-2 细胞模型 | 第23-24页 |
·药物平行人工膜渗透(PAMPA)模型 | 第24页 |
4 PAMPA 分类 | 第24-26页 |
·卵磷脂模拟人工渗透膜 | 第24-25页 |
·固定人工滤膜模型(FILTER-IAM) | 第25页 |
·仿生物膜渗透模型(BIOMIMETIC) | 第25页 |
·血脑屏障模型 | 第25页 |
·双漏槽模型(DOUBLE-SINK) | 第25页 |
·神经酰胺(CERAMIDES)渗透模型 | 第25-26页 |
·A-PAMPA 渗透模型 | 第26页 |
5 拟 PAMPA 模型人工膜材料——蛋黄卵磷脂的提取工艺研究 | 第26-29页 |
·卵磷脂的组成 | 第26页 |
·卵磷脂的物理化学性质 | 第26-27页 |
·卵磷脂的应用 | 第27页 |
·卵磷脂的提取分离方法 | 第27-29页 |
·有机溶剂提取法 | 第27页 |
·超临界 C02 萃取高纯度的卵磷脂 | 第27-28页 |
·柱层析法分离纯化卵磷脂 | 第28页 |
·乙酰化法 | 第28页 |
·无机盐复合沉淀法 | 第28-29页 |
·半透膜分离法 | 第29页 |
6 立项依据 | 第29-30页 |
7 研究思路 | 第30-32页 |
·蛋黄卵磷脂的提取、纯化 | 第30-31页 |
·人工膜的制备及 SU2237 渗透性的模拟 | 第31页 |
·SU2237 大鼠在体小肠吸收动力学研究 | 第31-32页 |
8 创新点 | 第32-33页 |
第一章 蛋黄卵磷脂的提取 | 第33-42页 |
1 实验试剂与仪器 | 第33页 |
·实验试剂 | 第33页 |
·实验仪器 | 第33页 |
2 提取条件的筛选 | 第33-36页 |
·操作步骤 | 第34页 |
·溶剂提取过程单因素对实验的影响 | 第34-36页 |
·提取时间的选择 | 第34-35页 |
·提取溶剂用量的选择 | 第35页 |
·提取温度的选择 | 第35-36页 |
3 提取工艺的优化实验 | 第36-37页 |
4 蛋黄卵磷脂的纯化 | 第37页 |
5 蛋黄卵磷脂的定性 | 第37-38页 |
·最大紫外吸收波长 | 第37-38页 |
·电子显微 | 第38页 |
6 蛋黄卵磷脂含磷量测定 | 第38-40页 |
·标准曲线 | 第39-40页 |
·磷标准母液的配制 | 第39页 |
·钼酸铵显色剂的配制 | 第39页 |
·标准回归方程制定 | 第39-40页 |
·样品消化 | 第40页 |
·样品测定 | 第40页 |
7 本章总结与讨论 | 第40-42页 |
第二章 人工膜模拟 SU2237 的渗透性 | 第42-55页 |
1. 实验试剂与仪器 | 第42页 |
·实验试剂 | 第42页 |
·实验仪器 | 第42页 |
2 实验基础条件的摸索 | 第42-44页 |
·卵磷脂的选择 | 第42-43页 |
·卵磷脂溶液的制备 | 第43页 |
·供体液和受体液 | 第43页 |
·PBS 溶液的配制方法 | 第43页 |
·供体液和受体液的配制 | 第43-44页 |
3 渗透性系数的计算公式和检测手段的选择 | 第44-45页 |
·渗透性系数的计算公式 | 第44页 |
·检测手段的选择 | 第44-45页 |
4 渗透模型 | 第45-48页 |
·实验影响因素的优化 | 第46-48页 |
·影响因素 | 第46页 |
·影响因素的水平确定 | 第46页 |
·渗透模型初步选择的优化实验 | 第46-48页 |
5 实验部分 | 第48-53页 |
·0.01M PBS 缓冲液额配制 | 第48页 |
·检验模型渗透性的药物—布洛芬 | 第48页 |
·布洛芬储备液的配制 | 第48页 |
·布洛芬标准曲线的制备 | 第48-49页 |
·对于渗透时间的考察 | 第49-51页 |
·布洛芬人工膜模拟渗透 | 第51-52页 |
·SU2237 人工膜模拟渗透 | 第52-53页 |
·SU2237 母液的配制 | 第52页 |
·SU2237 标准曲线的制备 | 第52-53页 |
·SU2237 人工膜模拟渗透结果 | 第53页 |
6 实验结果与讨论 | 第53-55页 |
第三章 :SU2237 大鼠在体小肠吸收动力学研究 | 第55-74页 |
1 实验材料与试剂 | 第55-56页 |
·实验材料 | 第55页 |
·实验动物 | 第55页 |
·实验仪器 | 第55页 |
·实验试剂 | 第55-56页 |
2 实验试液的配制 | 第56页 |
·K-R 氏液的配制 | 第56页 |
·SU2237 灌流液的配制 | 第56页 |
3 预实验 | 第56-59页 |
·管道饱和时间的确定 | 第56-57页 |
·肠段物理吸附作用的检测 | 第57-59页 |
4 方法学的确立 | 第59-63页 |
·特异性 | 第59-60页 |
·标准曲线 | 第60页 |
·回收率 | 第60-61页 |
·精密度 | 第61页 |
·日间精密度 | 第61页 |
·日内精密度 | 第61页 |
·样品稳定性 | 第61-63页 |
·冻融稳定性 | 第61-62页 |
·冷冻稳定性 | 第62页 |
·常温稳定性 | 第62-63页 |
5 大鼠单向灌流实验 | 第63-69页 |
·实验步骤 | 第63页 |
·数据处理 | 第63-64页 |
·统计学分析 | 第64页 |
·不同肠段对药物吸收的影响 | 第64-66页 |
·PH 对药物吸收的影响 | 第66-67页 |
·药物浓度对吸收的影响 | 第67-69页 |
6. 本章总结与讨论 | 第69-74页 |
第四章 结论和展望 | 第74-76页 |
1 结论 | 第74页 |
2 展望 | 第74-76页 |
参考文献 | 第76-86页 |
致谢 | 第86页 |