| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 前言 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-25页 |
| 1．1 壳聚糖酶 | 第9-11页 |
| 1．1．1 壳聚糖酶概述 | 第9-10页 |
| 1．1．2 壳聚糖酶的性质 | 第10页 |
| 1．1．3 壳聚糖酶的制备 | 第10-11页 |
| 1．2 酶的分离纯化 | 第11-15页 |
| 1．2．1 盐析 | 第12页 |
| 1．2．2 离子交换层析 | 第12-13页 |
| 1．2．3 凝胶过滤层析 | 第13-15页 |
| 1．3 目前国内外壳聚糖酶分离纯化工艺及酶学性质 | 第15-18页 |
| 1．4 固定化酶 | 第18-23页 |
| 1．4．1 固定化酶的制备方法 | 第18-20页 |
| 1．4．2 固定化酶的形状与性质 | 第20-22页 |
| 1．4．3 几丁质及其衍生物作为酶固定化载体研究进展 | 第22-23页 |
| 1．5 展望 | 第23-25页 |
| 第二章 材料与方法 | 第25-31页 |
| 2．1 实验材料和仪器 | 第25-26页 |
| 2．1．1 实验材料 | 第25页 |
| 2．1．2 主要实验设备仪器和用途 | 第25-26页 |
| 2．1．3 实验方法 | 第26页 |
| 2．2 分析方法 | 第26-31页 |
| 2．2．1 还原糖浓度的测定 | 第26-28页 |
| 2．2．2 酶活力的测定 | 第28页 |
| 2．2．3 蛋白质浓度的测定 | 第28-31页 |
| 第三章 壳聚糖酶的分离纯化 | 第31-37页 |
| 3．1 材料与方法 | 第31-32页 |
| 3．1．1 材料与仪器 | 第31页 |
| 3．1．2 Penicillium sp．菌株 | 第31页 |
| 3．1．3 培养基及培养条件 | 第31页 |
| 3．1．4 方法 | 第31-32页 |
| 3．2 结果与讨论 | 第32-36页 |
| 3．2．1 优化条件下发酵曲线 | 第32页 |
| 3．2．2 壳聚糖酶的纯化 | 第32-35页 |
| 3．2．3 聚丙稀酰胺凝胶电泳测定壳聚糖酶的分子量 | 第35-36页 |
| 3．3 小结 | 第36-37页 |
| 第四章 壳聚糖酶的酶学性质 | 第37-43页 |
| 4．1 材料与方法 | 第37页 |
| 4．1．1 实验材料 | 第37页 |
| 4．1．2 实验方法 | 第37页 |
| 4．1．3 分析方法 | 第37页 |
| 4．2 结果与讨论 | 第37-42页 |
| 4．2．1 温度对壳聚糖酶活力的影响 | 第37-38页 |
| 4．2．2 pH对壳聚糖酶活力的影响 | 第38页 |
| 4．2．3 金属离子对壳聚糖酶活力的影响 | 第38-39页 |
| 4．2．4 壳聚糖酶的底物专一性 | 第39-40页 |
| 4．2．5 表观米氏常数的测定 | 第40-41页 |
| 4．2．6 脱乙酰度对壳聚糖酶活力的影响 | 第41-42页 |
| 4．2．7 壳聚糖酶的热稳定性 | 第42页 |
| 4．3 小结 | 第42-43页 |
| 第五章 壳聚糖酶的固定化 | 第43-49页 |
| 5．1 材料与方法 | 第43-44页 |
| 5．1．1 实验仪器 | 第43页 |
| 5．1．2 酶固定化方法 | 第43-44页 |
| 5．1．3 分析方法 | 第44页 |
| 5．2 结果与讨论 | 第44-48页 |
| 5．2．1 戊二醛浓度对酶固定化的影响 | 第44-45页 |
| 5．2．2 加酶量对酶固定化的影响 | 第45-46页 |
| 5．2．3 固定时间对酶固定化的影响 | 第46页 |
| 5．2．4 固定化酶的扫描电镜图 | 第46-48页 |
| 5．3 小结 | 第48-49页 |
| 第六章 固定化酶的性质 | 第49-57页 |
| 6．1 材料与方法 | 第49页 |
| 6．1．1 材料 | 第49页 |
| 6．1．2 方法 | 第49页 |
| 6．2 结果与讨论 | 第49-56页 |
| 6．2．1 温度对固定化酶活力的影响 | 第49-51页 |
| 6．2．2 pH对固定化酶活力的影响 | 第51-52页 |
| 6．2．3 固定化酶的热稳定性 | 第52页 |
| 6．2．4 固定化酶与游离酶米氏常数的比较 | 第52-54页 |
| 6．2．5 固定化酶的操作与保存稳定性 | 第54-56页 |
| 6．3 小结 | 第56-57页 |
| 第七章 酶降解法制备壳寡聚糖 | 第57-68页 |
| 7．1 材料与方法 | 第57-60页 |
| 7．1．1 材料 | 第57页 |
| 7．1．2 实验仪器 | 第57页 |
| 7．1．3 分析方法 | 第57-59页 |
| 7．1．4 离子交换树脂分离降解产物 | 第59页 |
| 7．1．5 高效液相色谱分离降解产物 | 第59-60页 |
| 7．2 结果与讨论 | 第60-67页 |
| 7．2．1 温度对酶促反应的影响 | 第60页 |
| 7．2．2 pH对酶促反应的影响 | 第60-61页 |
| 7．2．3 壳寡聚糖的制备 | 第61-62页 |
| 7．2．4 高效液相色谱分离降解产物 | 第62-63页 |
| 7．2．5 VPO法测定壳低聚糖的分子量 | 第63-66页 |
| 7．2．6 凝胶渗透色谱法测定壳寡聚糖的分子量 | 第66页 |
| 7．2．7 壳寡聚糖的红外谱图 | 第66-67页 |
| 7．3 小结 | 第67-68页 |
| 结论与建议 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-73页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |