| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略名词表 | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第9-20页 |
| ·研究问题的由来 | 第9页 |
| ·文献综述 | 第9-19页 |
| ·淀粉相关研究进展 | 第9-12页 |
| ·淀粉的结构及功能 | 第9-10页 |
| ·淀粉的合成途径 | 第10-11页 |
| ·淀粉合成的调控研究 | 第11-12页 |
| ·脱落酸相关研究进展 | 第12-18页 |
| ·脱落酸的发现和功能 | 第12-13页 |
| ·脱落酸合成和分解途径 | 第13-14页 |
| ·脱落酸信号转导途径 | 第14-18页 |
| ·BAHD乙酰转移酶相关研究进展 | 第18-19页 |
| ·BAHD乙酰转移酶的功能 | 第18页 |
| ·BAHD乙酰转移酶的分类 | 第18-19页 |
| ·研究目的及意义 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-29页 |
| ·实验材料 | 第20-22页 |
| ·植物材料 | 第20页 |
| ·所用试剂及培养基 | 第20-21页 |
| ·菌株及质粒 | 第21-22页 |
| ·实验方法 | 第22-29页 |
| ·DNA提取、DNA水平PCR阳性检测 | 第22-23页 |
| ·DNA提取 | 第22页 |
| ·DNA水平PCR阳性检測 | 第22-23页 |
| ·RNA提取、qRT-PCR检测基因表达量 | 第23-26页 |
| ·RNA提取 | 第23页 |
| ·反转录合成第一链cDNA | 第23-24页 |
| ·quantitative Real-time PCR(qRT-PCR)检测基因表达量 | 第24-26页 |
| ·超表达植株基因芯片分析方法 | 第26-27页 |
| ·基因芯片样品制备 | 第26-27页 |
| ·芯片实验基本过程 | 第27页 |
| ·29k Arabidopsis Genome Array基因芯片说明 | 第27页 |
| ·植物材料处理 | 第27-28页 |
| ·植株代谢样提取测定内源ABA含量 | 第28页 |
| ·组织化学染色 | 第28页 |
| ·淀粉染色实验 | 第28页 |
| ·植株表型差异鉴定 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-43页 |
| ·BAT1转基因植株阳性鉴定 | 第29-30页 |
| ·BATl转基因植株表型分析 | 第30-31页 |
| ·BAT1超表达材料芯片数据分析 | 第31-32页 |
| ·BAT1负调控植物体内淀粉含量 | 第32-35页 |
| ·BAT1功能缺失突变体对外源ABA敏感 | 第35-36页 |
| ·BAT1能抑制植物内源ABA合成 | 第36-38页 |
| ·外源ABA处理能诱导野生型叶片中淀粉增加 | 第38-40页 |
| ·外源添加ABA合成抑制剂能回复BAT1缺乏材料中淀粉过量积累的表型 | 第40-43页 |
| 4 讨论 | 第43-46页 |
| ·BAT1研究结果总结 | 第43页 |
| ·BAT1能够负调控淀粉积累 | 第43-44页 |
| ·BAT1通过负调控植物体内ABA水平影响淀粉合成 | 第44-45页 |
| ·BAT1抑制植物体内ABA水平的机制分析 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
