| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-27页 |
| ·C_4光合作用的发现 | 第12页 |
| ·C_4光合作用概述 | 第12-14页 |
| ·C_4光合作用的优势 | 第14-16页 |
| ·植物光合类型的多样性 | 第16-19页 |
| ·C_4光合作用的演化 | 第19-23页 |
| ·C_4光合作用的演化谱系 | 第19页 |
| ·C_4光合作用的进化动力 | 第19-21页 |
| ·C_4光合作用的进化路径 | 第21-23页 |
| ·C_4光合关键酶基因在C_3植物中的转化 | 第23-25页 |
| ·C_4循环酶类在C_3植物中的作用 | 第23-24页 |
| ·M细胞特异性C_4酶的C_3转化 | 第24页 |
| ·BS细胞特异性C_4酶的C_3转化 | 第24-25页 |
| ·多基因转化 | 第25页 |
| ·C_4光合模式植物的研究 | 第25-26页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第26-27页 |
| 第一章 不同生长环境下大莎草的光合模式鉴定 | 第27-37页 |
| 1 材料与方法 | 第27-31页 |
| ·实验材料 | 第27页 |
| ·大莎草的培养种植 | 第27页 |
| ·大莎草石蜡组织切片制作 | 第27-28页 |
| ·大莎草稳定碳同位素比值测定 | 第28页 |
| ·大莎草空心杆PEPC,NADP-ME,PPDK酶活性的测定 | 第28-29页 |
| ·大莎草染色体观察计数 | 第29-31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-35页 |
| ·不同生长环境下大莎草空心杆的解剖结构 | 第31-32页 |
| ·稳定碳同位素特征 | 第32-33页 |
| ·大莎草C_4光合循环酶活性 | 第33-34页 |
| ·染色体观察计数 | 第34-35页 |
| 3 讨论 | 第35-37页 |
| ·大莎草的光合模式分析 | 第35页 |
| ·大莎草的研究价值 | 第35-36页 |
| ·染色体观察计数 | 第36-37页 |
| 第二章 大莎草C_3/C_4差异表达基因的功能研究 | 第37-66页 |
| 1 材料与方法 | 第37-51页 |
| ·水稻材料 | 第37页 |
| ·菌株、载体及目的基因 | 第37页 |
| ·利用RACE获得大莎草的全长cDNA序列 | 第37-40页 |
| ·载体构建 | 第40-41页 |
| ·干涉载体的构建 | 第40页 |
| ·超表达载体的构建 | 第40-41页 |
| ·根癌农杆菌介导的水稻遗传转化 | 第41页 |
| ·转化植株的分子检测 | 第41-43页 |
| ·T_0代转化植株的阳性检测 | 第41-42页 |
| ·T_0代转化植株的拷贝数检测 | 第42-43页 |
| ·T_0代单拷贝转化植株的表达量检测 | 第43-51页 |
| ·水稻总RNA抽提 | 第43-44页 |
| ·RNA反转录 | 第44-45页 |
| ·实时定量(Real-time)PCR表达量检测 | 第45-51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-64页 |
| ·dsOSA1-dsOSA9系列T_0代转化植株的阳性检测 | 第51页 |
| ·dsOSA1-dsOSA9系列T_0代转化植株的Southern blotting检测 | 第51-54页 |
| ·dsOSA1-dsOSA9系列T_0代转化植株的表达量分析 | 第54-56页 |
| ·利用RACE得到的大莎草cDNA的5’和3’末端序列 | 第56-61页 |
| ·大莎草全长CDS超表达载体的构建和转化 | 第61页 |
| ·OE2、OE5 T_0代转化植株的阳性检测 | 第61页 |
| ·OE2、OE5 T_0代转化植株的Southern blotting检测 | 第61-62页 |
| ·OE2、OE5 T_0代转化植株的表达量分析 | 第62-64页 |
| 3 讨论 | 第64-66页 |
| ·转录因子的功能研究 | 第64页 |
| ·转基因植株的拷贝数检测 | 第64-65页 |
| ·利用dsRNAi进行基因功能研究 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-74页 |
| 附录 | 第74-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
