| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1 文献综述 | 第8-23页 |
| ·植物抗旱的生理与分子机理 | 第8-9页 |
| ·干旱胁迫与脱落酸 | 第9-15页 |
| ·ABA的生物合成 | 第9-10页 |
| ·ABA的分解代谢 | 第10-11页 |
| ·植物细胞对ABA信号的感知 | 第11-13页 |
| ·ABA的信号传导 | 第13-15页 |
| ·AT14A的结构与功能 | 第15-20页 |
| ·AT14A蛋白简介 | 第15-16页 |
| ·整合素蛋白及其功能 | 第16-18页 |
| ·植物类整合素及其定位 | 第18-19页 |
| ·植物类整合素蛋白的功能 | 第19-20页 |
| ·参与环境胁迫的应答 | 第19-20页 |
| ·参与了极性细胞的定向生长过程 | 第20页 |
| ·参与了植物抵御微生物的防御过程 | 第20页 |
| ·拟南芥基因组学研究进展 | 第20-23页 |
| ·植物功能基因组学 | 第20-21页 |
| ·基因芯片技术 | 第21-22页 |
| ·cDNA微阵列 | 第21页 |
| ·寡聚核苷酸芯片 | 第21页 |
| ·基因表达谱存在的问题 | 第21-22页 |
| ·基因芯片数据分析 | 第22页 |
| ·聚类分析 | 第22页 |
| ·GO分析 | 第22页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-29页 |
| ·实验材料 | 第23页 |
| ·植物材料 | 第23页 |
| ·各种酶与试剂 | 第23页 |
| ·实验仪器 | 第23页 |
| ·拟南芥的种植与管理 | 第23-24页 |
| ·实验处理 | 第24页 |
| ·试验方法 | 第24-29页 |
| ·植株表型观察 | 第24页 |
| ·离体叶片失水速率 | 第24页 |
| ·ABA含量测定 | 第24-25页 |
| ·qRT-PCR实验方法 | 第25-27页 |
| ·RNA提取 | 第25-26页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第26页 |
| ·聚合酶链反应(qPCR) | 第26-27页 |
| ·Agilent mRNA表达谱芯片实验基本过程 | 第27-29页 |
| ·植物叶片RNA的提取(同上) | 第27页 |
| ·对样品RNA进行荧光标记(晶芯(?)cRNA扩增标记试剂盒) | 第27页 |
| ·杂交与清洗 | 第27页 |
| ·芯片扫描 | 第27-28页 |
| ·芯片图像的采集和数据分析 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-47页 |
| ·突变体at14a植株鉴定 | 第29页 |
| ·AT14A基因的表达模式 | 第29-30页 |
| ·at14a突变体对土壤干旱胁迫的响应 | 第30-31页 |
| ·PEG处理对AT14A基因表达的影响 | 第31页 |
| ·对照组(at14a/Col)基因表达的功能分析 | 第31-34页 |
| ·响应干旱胁迫基因的聚类分析 | 第34-35页 |
| ·差异表达基因的功能分析 | 第35-38页 |
| ·PEG模拟干旱对不同基因型拟南芥基因表达的影响 | 第38-43页 |
| ·PEG处理对不同基因型拟南芥内源ABA积累的影响 | 第43-47页 |
| 4 讨论与结论 | 第47-49页 |
| ·AT14A参与胁迫的应答 | 第47页 |
| ·Col与at14a胁迫差异基因的比较 | 第47页 |
| ·植物通过调控基因表达来实现干旱应答 | 第47-48页 |
| ·AT14A调控干旱胁迫下内源ABA的变化 | 第48页 |
| ·展望 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |