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副溶血性弧菌免疫检测新方法研究

摘要第1-4页
Abstract第4-9页
第一章 引言第9-16页
   ·副溶血性弧菌检测的意义与方法第9-12页
     ·副溶血性弧菌检测的意义第9-10页
     ·副溶血性弧菌的检测方法第10-12页
   ·副溶血性弧菌外膜蛋白的研究进展第12-13页
   ·稀土上转换发光纳米材料的研究与应用第13-14页
   ·论文的立题意义与研究内容第14-16页
     ·论文立题意义第14页
     ·论文主要研究内容第14-16页
第二章 实验材料与方法第16-29页
   ·材料与主要试剂第16-17页
     ·菌株、质粒和实验动物第16页
     ·主要试剂与工具酶第16页
     ·主要溶液的配制第16-17页
     ·主要仪器第17页
   ·实验原理第17-19页
     ·抗体与氨基化磁珠连接原理第17-18页
     ·基于磁分离、上转换材料发光的 V. parahaemolyticus 检测方法原理第18-19页
   ·实验方法第19-29页
     ·菌株的活化与培养鉴定第19页
     ·重组表达载体的构建第19-21页
     ·外源蛋白表达与纯化第21-23页
     ·动物免疫及抗血清制备第23-24页
     ·间接 ELISA 法评价抗体第24-25页
     ·免疫磁珠的制备第25-26页
     ·抗体的稀土发光上转换纳米粒子标记第26-27页
     ·基于磁分离、上转换荧光标记的副溶血性弧菌检测方法的建立第27页
     ·模拟水产样品中副溶血性弧菌的检测第27-29页
第三章 结果与讨论第29-51页
   ·副溶血性弧菌 ATCC 17802 菌株的复苏及革兰氏染色镜检第29页
   ·重组表达载体 pET28a-FlaA、pET24a-OmpU,pET24a-OmpW 的构建第29-30页
   ·目标蛋白的表达与纯化第30-33页
     ·FlaA 蛋白的表达与纯化第30-31页
     ·OmpW 蛋白的表达与纯化第31-32页
     ·OmpU 蛋白的表达与纯化第32-33页
   ·抗体纯化第33-34页
   ·抗体纯化前后效价测定第34-36页
     ·全菌抗体效价第34-35页
     ·FlaA 抗体效价第35页
     ·OmpU 抗体效价第35页
     ·OmpW 抗体效价第35-36页
   ·抗体针对全菌抗原效价测定第36页
   ·棋盘滴定法确定抗体、抗原最适工作浓度第36-38页
     ·全菌抗体及 V. parahaemolyticus 抗原最适工作浓度第36-37页
     ·FlaA 抗体及 V. parahaemolyticus 抗原最适工作浓度第37页
     ·OmpU 抗体及 V. parahaemolyticus 抗原最适工作浓度第37-38页
     ·OmpW 抗体及 V. parahaemolyticus 抗原最适工作第38页
   ·抗体浓度测定第38页
   ·敏感性试验第38-39页
     ·全菌抗体敏感性实验第38页
     ·FlaA 抗体敏感性实验第38-39页
     ·OmpU 抗体敏感性实验第39页
     ·OmpW 抗体敏感性实验第39页
   ·抗体特异性实验第39-41页
     ·全菌抗体特异性实验第39-40页
     ·FlaA 抗体特异性实验第40页
     ·OmpU 抗体特异性实验第40页
     ·OmpW 抗体特异性实验第40-41页
   ·流式细胞术评价抗体特异性第41-43页
     ·全菌抗体特异性评价第41页
     ·FlaA 抗体特异性评价第41-42页
     ·OmpU 抗体特异性评价第42页
     ·OmpW 抗体特异性评价第42-43页
   ·磁珠与全菌抗体的结合与表征第43-46页
     ·氨基化磁珠的表征第43-44页
     ·氨基化磁珠与全菌抗体结合的表征第44-45页
     ·孵育时间的优化第45页
     ·全菌抗体初始浓度的优化第45-46页
   ·氨基化 UCNPs 与 FlaA 抗体的结合与表征第46-49页
     ·UCNPs 的表征第46-47页
     ·氨基化 UCNPs 的表征第47-48页
     ·氨基化 UCNPs 与 FlaA 抗体结合的表征第48-49页
     ·孵育时间的优化第49页
     ·FlaA 抗体初始浓度的优化第49页
   ·副溶血性弧菌的检测第49-50页
   ·模拟水产品中副溶血性弧菌的检测第50-51页
主要结论与展望第51-52页
致谢第52-53页
参考文献第53-58页
附录第58页

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