| 中文摘要 | 第1-16页 |
| ABSTRACTS | 第16-21页 |
| 符号说明 | 第21-23页 |
| 第一部分 前言 | 第23-41页 |
| 1 神经干细胞移植治疗神经系统疾病 | 第23-30页 |
| ·神经干细胞的分布 | 第24页 |
| ·神经干细胞的生物学特性 | 第24-25页 |
| ·神经干细胞移植 | 第25-30页 |
| ·神经干细胞移植的细胞来源 | 第25页 |
| ·神经干细胞移植途径 | 第25-27页 |
| ·神经干细胞移植的应用 | 第27-30页 |
| ·神经干细胞移植亟待解决的问题 | 第30页 |
| 2 星形胶质细胞在大脑神经损伤后的保护作用 | 第30-37页 |
| ·星形胶质细胞的经典生物学功能 | 第31页 |
| ·星形胶质细胞的内分泌及营养修复作用 | 第31-32页 |
| ·反应性星形胶质细胞对神经细胞的保护作用 | 第32-35页 |
| ·损伤缝合和组织重构 | 第33页 |
| ·局部免疫反应调控 | 第33-34页 |
| ·神经发生 | 第34-35页 |
| ·星形胶质细胞的逆分化作用 | 第35-37页 |
| 3 海参多糖及其药理活性研究进展 | 第37-40页 |
| ·海参多糖成分概况 | 第37-38页 |
| ·海参多糖主要药理活性及临床应用 | 第38-40页 |
| ·抗凝血和溶栓 | 第38-39页 |
| ·抗病毒 | 第39页 |
| ·其他作用 | 第39-40页 |
| 4 本课题研究的目的和意义 | 第40-41页 |
| 第二部分 刺参多糖促进神经球细胞迁移和分化作用的研究 | 第41-71页 |
| 1 材料 | 第42-48页 |
| ·实验仪器 | 第42-43页 |
| ·实验耗材 | 第43页 |
| ·实验材料 | 第43页 |
| ·实验动物 | 第43页 |
| ·试验试剂 | 第43-45页 |
| ·引物序列 | 第45页 |
| ·主要溶液及试剂配方 | 第45-48页 |
| 2 方法 | 第48-56页 |
| ·刺参多糖的分离纯化和理化性质鉴定 | 第48-49页 |
| ·刺参粗多糖的提取 | 第48页 |
| ·粗多糖的脱色 | 第48页 |
| ·刺参粗多糖的纯化和活性筛选实验 | 第48-49页 |
| ·HS-3理化性质的鉴定 | 第49页 |
| ·HS-3诱导神经球细胞迁移的作用及机制研究 | 第49-56页 |
| ·神经干细胞的分离和培养 | 第49-50页 |
| ·神经干细胞球的传代 | 第50页 |
| ·神经干细胞多向分化潜能的鉴定 | 第50页 |
| ·药物处理 | 第50-51页 |
| ·神经球迁移距离的测定 | 第51页 |
| ·免疫荧光染色 | 第51页 |
| ·BrdU检测细胞增殖情况 | 第51-52页 |
| ·Hoechst/PI双染 | 第52页 |
| ·Western blotting | 第52-53页 |
| ·RT-PCR | 第53-55页 |
| ·数据统计 | 第55-56页 |
| 3 结果 | 第56-68页 |
| ·刺参多糖的纯化、活性筛选和理化性质鉴定 | 第56-59页 |
| ·刺参多糖的DEAE离子交换层析 | 第56-57页 |
| ·刺参多糖组分的活性筛选 | 第57页 |
| ·刺参多糖的凝胶层析分离 | 第57-58页 |
| ·HS-3理化性质的鉴定 | 第58-59页 |
| ·HS-3促进神经球细胞迁移和分化作用的研究 | 第59-68页 |
| ·神经细胞球的培养 | 第59-60页 |
| ·神经球干细胞特性鉴定 | 第60-61页 |
| ·刺参多糖(HS-3)诱导神经球粘附和迁移 | 第61-62页 |
| ·HS-3对神经球细胞增殖作用 | 第62-63页 |
| ·HS-3维持神经球细胞存活的作用 | 第63-64页 |
| ·HS-3诱导神经球细胞的分化作用 | 第64-66页 |
| ·HS-3诱导神经球粘附迁移分化可能的作用机制 | 第66-68页 |
| 4 讨论 | 第68-70页 |
| 5 本章小结 | 第70-71页 |
| 第三部分 刺参多糖促进星形胶质细胞活化作用机制的研究 | 第71-94页 |
| 1 材料 | 第72-73页 |
| ·实验仪器 | 第72页 |
| ·实验耗材 | 第72页 |
| ·实验动物 | 第72页 |
| ·试验试剂 | 第72-73页 |
| ·主要溶液及试剂配方 | 第73页 |
| 2 方法 | 第73-75页 |
| ·星形胶质细胞的分离和培养 | 第73-74页 |
| ·药物处理 | 第74页 |
| ·MTT试验 | 第74页 |
| ·伊红染色 | 第74页 |
| ·流式细胞术检测细胞周期 | 第74-75页 |
| ·Transwell实验 | 第75页 |
| ·数据统计 | 第75页 |
| 3 结果 | 第75-87页 |
| ·HS-4的理化性质 | 第75页 |
| ·星形胶质细胞的培养 | 第75-76页 |
| ·HS-4对星形胶质细胞存活的影响 | 第76-77页 |
| ·HS-4诱导星形胶质细胞形态学的变化 | 第77-78页 |
| ·HS-4促进星形细胞的增殖作用 | 第78-82页 |
| ·HS-4诱导静止期星形胶质细胞进入S期 | 第82-83页 |
| ·HS-4和FGF-2协同诱导细胞活化信号通路的筛选 | 第83-85页 |
| ·HS-4和FGF-2通过ERK信号通路诱导星形胶质细胞活化 | 第85-86页 |
| ·HS-4和FGF-2诱导星形胶质细胞的迁移作用 | 第86-87页 |
| 4 讨论 | 第87-92页 |
| 5 本章小结 | 第92-94页 |
| 全文总结 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-106页 |
| 发表论文一 Morph ological transformation and proliferation of rat astrocytes asinduced by sulfated polysaccharides from the sea cucumber Stichopus japonicus | 第106-112页 |
| 发表论文二 Sulfated Polysaccharide isolated from the sea cucumber Stichopusjaponicus promotes Neurosphere migration and differentiation via up-regulationof N-cadherin | 第112-120页 |
| 致谢 | 第120-121页 |
| 博士期间发表的论文 | 第121-122页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第122页 |
