| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 第一章 前言 | 第9-16页 |
| 1 微生物多糖的概述 | 第9-12页 |
| ·多糖的研究进展 | 第9-11页 |
| ·糖链的结构分析 | 第11页 |
| ·微生物多糖的药理活性 | 第11-12页 |
| 2 多糖的结构修饰 | 第12-15页 |
| ·化学方法修饰 | 第13-14页 |
| ·生物方法修饰 | 第14-15页 |
| ·物理方法修饰 | 第15页 |
| 3 课题的立题背景和主要内容 | 第15-16页 |
| 第二章 PS202摇瓶发酵动力学的研究 | 第16-34页 |
| 1 引言 | 第16页 |
| 2 试验材料与方法 | 第16-19页 |
| ·基本材料与方法 | 第16-17页 |
| ·发酵过程中多糖含量测定 | 第17-18页 |
| ·残糖的测定 | 第18-19页 |
| ·菌体含量测定 | 第19页 |
| ·菌种16SrDNA测序 | 第19页 |
| 3 摇瓶发酵动力学的研究 | 第19-25页 |
| ·菌体增长数学模型方程 | 第19-22页 |
| ·产物形成数学模型 | 第22-23页 |
| ·底物消耗的动力学模型 | 第23-25页 |
| 4 结果与讨论 | 第25-32页 |
| ·菌种测序结果 | 第25-27页 |
| ·摇床发酵过程曲线 | 第27-29页 |
| ·菌体生长模型 | 第29-30页 |
| ·产物生成模型的建立 | 第30-31页 |
| ·底物消耗模型 | 第31-32页 |
| 5 本章小结 | 第32-34页 |
| 第三章 可溶性胞外多糖PS202的分离纯化及其结构分析 | 第34-49页 |
| 1 引言 | 第34页 |
| 2 主要实验材料和仪器 | 第34-35页 |
| 3 实验方法 | 第35-37页 |
| ·陶瓷膜(孔径0.22μm)过滤实验 | 第35页 |
| ·除去多糖PS202中的色素、蛋白和小分子 | 第35页 |
| ·多糖PS202的分离和纯化 | 第35页 |
| ·多糖PS202的纯度鉴定及分子量测定 | 第35-36页 |
| ·多糖PS202的红外光谱测定 | 第36页 |
| ·多糖PS202的核磁共振实验 | 第36页 |
| ·多糖PS202的高碘酸氧化实验 | 第36-37页 |
| 4 实验结果 | 第37-48页 |
| ·多糖PS202陶瓷膜(孔径0.22μm)过滤实验结果 | 第37-38页 |
| ·多糖PS202 DEAE Sepharose Fast Flow柱层析分离 | 第38-41页 |
| ·多糖PS202的纯度鉴定及分子量测定 | 第41-42页 |
| ·多糖PS202红外光谱鉴定结果 | 第42-44页 |
| ·多糖PS202核磁共振鉴定结果 | 第44-47页 |
| ·多糖PS202高碘酸氧化结果 | 第47-48页 |
| 5 本章小结 | 第48-49页 |
| 第四章 多糖PS202的硫酸酯化及其结构研究 | 第49-60页 |
| 1 引言 | 第49-50页 |
| 2 试验方法 | 第50-52页 |
| ·硫酸基含量的测定 | 第50-51页 |
| ·可溶性胞外多糖的提取和精制 | 第51页 |
| ·硫酸酯化多糖PS202S的制备 | 第51页 |
| ·PS202硫酸酯化条件的摸索 | 第51-52页 |
| ·PS202S红外光谱测定 | 第52页 |
| ·PS202S核磁共振实验 | 第52页 |
| 3 试验结果 | 第52-59页 |
| ·反应温度对PS202多糖硫酸酯化的影响 | 第52-53页 |
| ·氯磺酸和吡啶的比例对PS202硫酸酯化的影响 | 第53-54页 |
| ·反应时间对PS202多糖硫酸酯化的影响 | 第54页 |
| ·正交实验分析结果 | 第54-55页 |
| ·PS202S红外光谱鉴定结果 | 第55-57页 |
| ·PS202S核磁共振鉴定结果 | 第57-59页 |
| 4 本章小结 | 第59-60页 |
| 第五章 结论与展望 | 第60-63页 |
| 1 结论 | 第60-61页 |
| 2 讨论 | 第61页 |
| 3 创新点 | 第61-62页 |
| 4 展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第69页 |
