摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
引言 | 第12-14页 |
第一部分 酵母双杂交技术筛选与SOX4相互作用的蛋白质 | 第14-26页 |
材料与方法 | 第14-20页 |
1.材料及来源 | 第14-15页 |
·菌株和质粒 | 第14页 |
·主要试剂 | 第14-15页 |
2.实验方法 | 第15-20页 |
·pGBKT7-SOX4(1-133)和pGBKT7-SOX4(130-380)载体构建 | 第15-17页 |
·Ubc9基因的钓取和克隆 | 第17页 |
·文库扩增 | 第17页 |
·酵母细胞的转化 | 第17-18页 |
·质粒提取、酶切片段纯化、PCR反应产物回收 | 第18页 |
·Western blot分析 | 第18页 |
·从酵母中提取质粒 | 第18-20页 |
结果 | 第20-25页 |
1.诱饵表达载体的构建和鉴定 | 第20页 |
2.诱饵蛋白在酵母细胞中的表达鉴定 | 第20-21页 |
3.诱饵蛋白在酵母细胞中自身转录激活活性的测定 | 第21页 |
4.人乳腺文库的扩增 | 第21-22页 |
5.初步筛选结果 | 第22页 |
6.重复鉴定结果 | 第22-23页 |
7.筛选到的基因cDNA序列的钓取及克隆 | 第23-25页 |
小结 | 第25-26页 |
第二部分 SOX4与Ubc9相互作用的验证 | 第26-38页 |
材料与方法 | 第26-32页 |
1.材料、试剂及仪器 | 第26-27页 |
·质粒、菌株、细胞株 | 第26页 |
·主要试剂 | 第26页 |
·细胞培养试剂 | 第26-27页 |
2.实验方法 | 第27-32页 |
·酵母表达载体的构建 | 第27-29页 |
·GST融合表达载体的构建 | 第29页 |
·GFP-SOX4和RFP-Ubc9融合表达载体的构建 | 第29-30页 |
·293T细胞瞬时转染 | 第30页 |
·GST融合蛋白在大肠杆菌中的表达 | 第30页 |
·GST沉淀(GST pull-down)分析 | 第30-31页 |
·免疫共沉淀 | 第31-32页 |
结果 | 第32-37页 |
1.酵母表达载体的构建及鉴定 | 第32页 |
2.GST表达载体的构建,鉴定以及诱导表达与纯化 | 第32-33页 |
·GST表达载体的构建与鉴定 | 第32-33页 |
·GST-Ubc9融合蛋白的诱导表达与纯化 | 第33页 |
3.GFP-SOX4和RFP-Ubc9表达载体的构建 | 第33-34页 |
4.SOX4与Ubc9相互作用的验证 | 第34-37页 |
·SOX4及缺失突变体在酵母里与Ubc9的结合 | 第34-35页 |
·SOX4与Ubc9在体外的相互作用 | 第35页 |
·SOX4与Ubc9在体内的相互作用 | 第35-36页 |
·SOX4与Ubc9在活细胞内的共定位 | 第36-37页 |
小结 | 第37-38页 |
第三部分 SOX4与Ubc9复合物的初步功能研究 | 第38-49页 |
材料与方法 | 第38-41页 |
1 材料 | 第38-39页 |
·细胞株、质粒 | 第38页 |
·试剂及仪器 | 第38-39页 |
2.实验方法 | 第39-41页 |
·SOX11表达载体的构建 | 第39页 |
·Ubc9C93S突变体表达载体的构建 | 第39-40页 |
·细胞转染 | 第40页 |
·荧光素酶活性测定方法 | 第40-41页 |
结果 | 第41-48页 |
1.pDBD-SOX11载体的构建 | 第41页 |
2.pXJ40-HA-Ubc9C93S表达载体的构建 | 第41-42页 |
3.Ubc9对SOX4转录活性的影响 | 第42-45页 |
·Ubc9抑制SOX4的转录活性 | 第42-43页 |
·Ubc9对SOX11的转录活性无影响 | 第43页 |
·Ubc9抑制SOX4的转录活性与其SUMO-1连接酶活性无关 | 第43-44页 |
·Ubc9在T47D细胞中抑制内源性的SON4的转录活性 | 第44-45页 |
4.SOX4和Ubc9对p53转录活性的影响 | 第45-46页 |
5.SOX4-Ubc9复合物对p53转录活性的影响 | 第46-48页 |
小结 | 第48-49页 |
讨论 | 第49-52页 |
总结 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
附录 | 第57页 |
英文缩略词 | 第57-59页 |
发表的文章 | 第59-67页 |