| 致谢 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 缩写 | 第12-14页 |
| 目次 | 第14-17页 |
| 1 引言 | 第17-44页 |
| ·植物光敏色素的研究进展 | 第17-22页 |
| ·光敏色素分子基因 | 第17-18页 |
| ·光敏色素分子特征 | 第18-21页 |
| ·光敏色素的类型 | 第21-22页 |
| ·光敏色素的反应方式 | 第22页 |
| ·植物光敏色素信号传导的研究进展 | 第22-29页 |
| ·光敏色素的核定位 | 第25页 |
| ·光信号转导的核内调节因子 | 第25-29页 |
| ·PIFs | 第25-27页 |
| ·HY5 | 第27-28页 |
| ·COP1/SPA | 第28-29页 |
| ·植物光敏色素的生理功能 | 第29-32页 |
| ·光敏色素在植物个体发育中的作用 | 第29-30页 |
| ·光敏色素与光周期 | 第30页 |
| ·光敏色素与昼夜节律钟 | 第30-31页 |
| ·光敏色素与植物激素 | 第31-32页 |
| ·PhyA信号传导作用因子FHY3/FAR1的研究进展 | 第32-40页 |
| ·本论文的立题依据及研究内容 | 第40-44页 |
| ·立题依据 | 第40-42页 |
| ·研究内容 | 第42-44页 |
| 2 FHY3和FAR1在phyA的信号传导中的部分重叠功能 | 第44-58页 |
| ·引言 | 第44页 |
| ·材料 | 第44-46页 |
| ·植物品种 | 第44-45页 |
| ·菌株 | 第45页 |
| ·大肠杆菌(Escherichia coli) | 第45页 |
| ·农杆菌(Agrobacterium tumefaciens) | 第45页 |
| ·质粒载体 | 第45页 |
| ·试剂盒及酶 | 第45-46页 |
| ·其他各类化合物 | 第46页 |
| ·方法 | 第46-53页 |
| ·载体构建 | 第46-48页 |
| ·载体构建方法 | 第46-47页 |
| ·载体具体构建步骤 | 第47-48页 |
| ·大肠杆菌转化 | 第48页 |
| ·感受态细胞制备 | 第48页 |
| ·转化 | 第48页 |
| ·农杆菌的转化 | 第48-49页 |
| ·感受态细胞制备 | 第48页 |
| ·转化 | 第48-49页 |
| ·拟南芥基因组DNA提取 | 第49页 |
| ·拟南芥总RNA的提取 | 第49页 |
| ·普通方法 | 第49页 |
| ·试剂盒方法 | 第49页 |
| ·PCR反应 | 第49-51页 |
| ·PCR反应体系 | 第49-51页 |
| ·PCR反应条件 | 第51页 |
| ·PCR引物序列 | 第51页 |
| ·RT-PCR检测 | 第51页 |
| ·Real-Time PCR检测 | 第51-52页 |
| ·拟南芥种植 | 第52页 |
| ·拟南芥无菌培养 | 第52页 |
| ·拟南芥土壤种植 | 第52页 |
| ·拟南芥转化 | 第52-53页 |
| ·实验结果 | 第53-58页 |
| ·FHY3和FAR1的表达特征 | 第53-55页 |
| ·FHY3和FAR1在phyA的信号传导中的部分重叠作用 | 第55-58页 |
| 3 FHY3不同结构域的功能研究 | 第58-92页 |
| ·引言 | 第58-59页 |
| ·材料 | 第59-60页 |
| ·植物品种 | 第59页 |
| ·菌株 | 第59-60页 |
| ·大肠杆菌 | 第59页 |
| ·农杆菌 | 第59页 |
| ·酵母菌(Yeast) | 第59-60页 |
| ·质粒载体 | 第60页 |
| ·试剂盒及酶 | 第60页 |
| ·其他各类化合物 | 第60页 |
| ·方法 | 第60-71页 |
| ·载体构建 | 第60-64页 |
| ·载体构建方法 | 第60-61页 |
| ·载体具体构建步骤 | 第61-64页 |
| ·点突变 | 第64-65页 |
| ·大肠杆菌转化 | 第65页 |
| ·农杆菌转化 | 第65页 |
| ·酵母杂交 | 第65-66页 |
| ·酵母单杂交 | 第65-66页 |
| ·酵母双杂交 | 第66页 |
| ·β-半乳糖苷酶(β-galactocidase)的测定 | 第66页 |
| ·拟南芥基因组DNA提取 | 第66-67页 |
| ·拟南芥总RNA的提取 | 第67页 |
| ·PCR反应 | 第67页 |
| ·RT-PCR检测 | 第67页 |
| ·酵母蛋白质的提取 | 第67页 |
| ·免疫印迹实验(Immunoblot assay) | 第67-68页 |
| ·电泳迁移率检测(Electrophoretic Mobility Shift Assay,EMSA) | 第68-69页 |
| ·拟南芥原生质体转化 | 第69-70页 |
| ·质粒DNA的提取 | 第69页 |
| ·拟南芥原生质体的分离 | 第69页 |
| ·PEG转化 | 第69-70页 |
| ·LUC和GUS的测定 | 第70页 |
| ·叶绿素和花青素的测定 | 第70页 |
| ·叶绿素的测定 | 第70页 |
| ·花青素的测定 | 第70页 |
| ·Confocal显微镜观察 | 第70-71页 |
| ·拟南芥种植 | 第71页 |
| ·拟南芥转化 | 第71页 |
| ·实验结果 | 第71-92页 |
| ·FHY3氮末端C2H2型锌指结构域的DNA结合功能 | 第71-78页 |
| ·酵母体系中FHY3的DNA结合活性验证 | 第71-72页 |
| ·EMSA实验中FHY3的DNA结合活性验证 | 第72-75页 |
| ·拟南芥转基因植株中FHY3的DNA结合活性验证 | 第75-78页 |
| ·FHY3转座酶催化结构域和SWIM模体的转录激活活性 | 第78-88页 |
| ·酵母体系中FHY3转录激活活性验证 | 第78-80页 |
| ·拟南芥原生质体中FHY3转录激活活性验证 | 第80-82页 |
| ·拟南芥转基因植株中FHY3转录激活活性验证 | 第82-88页 |
| ·FHY3的转录激活活性与其二聚体形成 | 第88-90页 |
| ·FHY3的细胞核定位 | 第90-92页 |
| 4 讨论 | 第92-96页 |
| ·FHY3和FAR1的部分重叠功能 | 第92-93页 |
| ·FHY3不同结构域的功能分析 | 第93-96页 |
| 5 结论与展望 | 第96-99页 |
| 参考文献 | 第99-117页 |
| 附录1 各类化合物 | 第117-121页 |
| 附录2 PCR引物 | 第121-123页 |
| 附录3 氨基酸及碱基 | 第123-125页 |
| 作者简历 | 第125页 |
| 攻读博士学位期间发表论文 | 第125页 |
