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生物法生产手性乙偶姻及(2S,3S)-2,3-丁二醇的研究

目录第1-8页
摘要第8-10页
ABSTRACT第10-12页
第一章 前言第12-28页
 1 乙偶姻及2,3-丁二醇简介第12-13页
   ·乙偶姻及2,3-丁二醇的性质第12-13页
   ·乙偶姻及2,3-丁二醇的用途第13页
 2 细菌中不同构型2,3-丁二醇及乙偶姻的代谢途径第13-15页
 3 2,3-丁二醇和乙偶姻的合成第15-17页
 4 手性乙偶姻及2,3-丁二醇的合成第17-20页
 5 辅因子再生的研究第20-24页
   ·化学法第21页
   ·酶法第21-23页
   ·电化学法第23-24页
   ·光化学法第24页
 6 本论文的立题依据第24-28页
   ·构建共表达菌株生产手性乙偶姻及(2S,3S)-2,3-BD第24-25页
   ·利用基因敲除菌株实现(3R)-AC的生产第25-28页
第二章 2,3-丁二醇脱氢酶与NADH氧化酶共表达转化子的构建第28-44页
 1 材料与方法第28-35页
   ·主要试剂和仪器第28-29页
   ·菌株、质粒及引物第29-30页
   ·培养基第30页
   ·DNA操作技术第30-35页
   ·蛋白的诱导表达第35页
   ·SDS-PAGE电泳第35页
   ·转化子转化能力的测定第35页
 2 结果和讨论第35-41页
   ·目的基因的扩增第36-38页
   ·ydjL基因的表达第38-39页
   ·ydjL与nox基因的共表达第39-40页
   ·各转化子酶活的测定结果第40页
   ·对转化子细胞活力的初步测定第40-41页
 3 本章小结第41-44页
第三章 转化子催化反应相关条件的优化第44-56页
 1 材料与方法第44-47页
   ·主要试剂和仪器第44-45页
   ·菌株第45页
   ·气相最佳检测条件的确定第45页
   ·本研究各相关物质气相标准曲线的绘制第45页
   ·休止细胞最佳培养条件的确定第45-46页
   ·反应体系最佳休止细胞浓度的确定第46页
   ·转化子催化反应pH的优化第46页
   ·转化子催化反应底物浓度的优化第46-47页
   ·反应体系装液量的优化第47页
 2 结果和讨论第47-55页
   ·气相最佳检测条件下,AC和BD各种构象混合物的分离结果第47-48页
   ·气相最佳检测条件下,AC和BD各构象化合物标准曲线的绘制第48-52页
   ·反应体系最佳休止细胞浓度的优化结果第52页
   ·反应体系最佳pH值的优化结果第52-53页
   ·反应体系最佳底物浓度的优化结果第53-55页
   ·反应体系最佳装液量的优化结果第55页
 3 本章小结第55-56页
第四章 手性乙偶姻及(2S,3S)-2,3-丁二醇的生产第56-64页
 1 材料与方法第56-58页
   ·主要试剂和仪器第56-57页
   ·反应催化剂的制备第57页
   ·(3S)-乙偶姻的生产第57页
   ·(3R)-乙偶姻的生产第57-58页
   ·(2S,3S)-2,3-丁二醇的手性拆分第58页
   ·气相检测产物第58页
 2 结果和讨论第58-61页
   ·(3S)-乙偶姻生产反应过程第58-60页
   ·(3R)-乙偶姻的生产第60-61页
   ·(2S,3S)-2,3-BD的手性拆分第61页
 3 本章小结第61-64页
第五章 Bacillus subtilis 168 ydjL基因的敲除第64-80页
 1 材料与方法第65-68页
   ·主要试剂和仪器第65页
   ·菌株及质粒第65-66页
   ·枯草芽孢杆菌感受态细胞制备及转化的一般方法第66页
   ·枯草芽孢杆菌感受态细胞制备及转化最佳条件的摸索第66-67页
   ·连接液直接转化感受态细胞第67页
   ·双抗生素筛选完整的整合载体第67-68页
   ·对挑选的转化子进行发酵培养第68页
   ·PCR获取同源片断第68页
   ·PCR验证转化子第68页
 2 结果和讨论第68-79页
   ·ydjL-340同源片断的获取第69-70页
   ·ydjL-340与重组载体的连接第70-71页
   ·ydjL-700片断的获取及与载体的连接第71页
   ·连接后重组载体大小的验证第71-74页
   ·双抗性筛选后,载体大小的验证第74-76页
   ·本研究中所采用的基因敲除机理第76-77页
   ·枯草芽孢杆菌感受态细胞制备及转化条件的优化第77-79页
 3 本章小结第79-80页
参考文献第80-88页
致谢第88页

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