中文摘要 | 第8-9页 |
Abstract | 第9页 |
1 前言 | 第10-25页 |
1.1 酚氧化酶简介 | 第10-19页 |
1.1.1 酚氧化酶的组织定位 | 第10-11页 |
1.1.2 酚氧化酶的功能 | 第11-13页 |
1.1.3 酚氧化酶活化的分子机制 | 第13-15页 |
1.1.4 酚氧化酶的分子生物学研究 | 第15-17页 |
1.1.5 酚氧化酶的抑制剂研究 | 第17-19页 |
1.2 小菜蛾抗双酰胺类杀虫剂的研究进展 | 第19-22页 |
1.2.1 小菜蛾的发生及危害 | 第19页 |
1.2.2 双酰胺类杀虫剂的研究进展 | 第19-22页 |
1.3 选题目的和意义 | 第22-24页 |
1.4 本研究的技术路线 | 第24-25页 |
2 材料与方法 | 第25-35页 |
2.1 试虫饲养 | 第25页 |
2.2 试剂及仪器设备 | 第25-26页 |
2.2.1 主要试剂 | 第25页 |
2.2.2 主要仪器及设备 | 第25-26页 |
2.3 小菜蛾血淋巴的收集 | 第26页 |
2.4 小菜蛾总RNA的提取、鉴定及cDNA的合成 | 第26-28页 |
2.4.1 小菜蛾总RNA的提取 | 第26-27页 |
2.4.2 小菜蛾总RNA的检测 | 第27页 |
2.4.3 小菜蛾第一链cDNA合成 | 第27-28页 |
2.5 荧光定量PCR(Real-time-PCR) | 第28-29页 |
2.6 小菜蛾总蛋白的提取及浓度标定 | 第29-31页 |
2.6.1 小菜蛾总蛋白的提取 | 第29-30页 |
2.6.2 蛋白浓度的标定 | 第30-31页 |
2.7 SDS-PAGE电泳 | 第31页 |
2.7.1 凝胶制备 | 第31页 |
2.7.2 上样 | 第31页 |
2.7.3 电泳 | 第31页 |
2.8 WesternBlot | 第31-33页 |
2.8.1 转膜 | 第31-32页 |
2.8.2 免疫反应 | 第32页 |
2.8.3 ECL发光显影 | 第32-33页 |
2.8.4 凝胶图像分析 | 第33页 |
2.9 小菜蛾酶活力测定 | 第33页 |
2.9.1 小菜蛾酚氧化酶提取 | 第33页 |
2.9.2 小菜蛾酚氧化酶酶活力测定方法 | 第33页 |
2.10 三种化合物对小菜蛾酚氧化酶活力的影响 | 第33-35页 |
2.10.1 三种化合物对小菜蛾酚氧化酶活力的影响 | 第33-34页 |
2.10.2 化合物根皮苷对小菜蛾酚氧化酶抑制效应的测定 | 第34页 |
2.10.3 化合物根皮苷对小菜蛾酚氧化酶的抑制类型及抑制常数 | 第34-35页 |
3 结果与分析 | 第35-42页 |
3.1 小菜蛾总RNA的提取 | 第35页 |
3.2 敏感与抗性小菜蛾酚氧化酶活性的差异 | 第35-36页 |
3.3 敏感与抗性品系小菜蛾酚氧化酶的表达研究 | 第36-37页 |
3.3.1 PxPPO1的表达研究 | 第36-37页 |
3.3.2 PxPPO2的表达研究 | 第37页 |
3.4 抗性品系/种群小菜蛾PPO蛋白含量 | 第37-39页 |
3.4.1 抗性品系/种群小菜蛾PPO1蛋白含量 | 第37-38页 |
3.4.2 抗性品系/种群小菜蛾PPO2蛋白含量 | 第38-39页 |
3.5 三种化合物对小菜蛾酚氧化酶酶活力影响 | 第39-42页 |
3.5.1 三种化合物对小菜蛾酚氧化酶酶活力影响 | 第39-40页 |
3.5.2 根皮苷对小菜蛾酚氧化酶的抑制效应 | 第40-41页 |
3.5.3 根皮苷对小菜蛾PO的抑制类型及抑制常数 | 第41-42页 |
4 讨论 | 第42-46页 |
4.1 不同品系小菜蛾的酚氧化酶酶活力 | 第42页 |
4.2 不同品系小菜蛾酚氧化酶基因表达量的检测 | 第42-43页 |
4.3 不同品系小菜蛾PPO1、PPO2翻译表达量的检测 | 第43-44页 |
4.4 三种化合物对小菜蛾酚氧化酶酶活力的影响 | 第44页 |
4.5 化合物根皮苷对小菜蛾酚氧化酶酶活力的动力学研究 | 第44-46页 |
5 结论 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-57页 |
致谢 | 第57页 |