| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-45页 |
| 1.1 小麦杂种优势利用概况 | 第15-22页 |
| 1.1.1 小麦杂种优势利用途径 | 第15-18页 |
| 1.1.2 小麦杂种优势利用研究现状 | 第18-22页 |
| 1.2 植物雄性不育分子机理的研究 | 第22-30页 |
| 1.2.1 细胞质雄性不育（CMS）研究进展 | 第22-26页 |
| 1.2.2 光温敏雄性不育（PTMS）研究进展 | 第26-28页 |
| 1.2.3 化学杀雄剂（CHA）诱导雄性不育研究进展 | 第28-30页 |
| 1.3 植物基因组学与雄性不育 | 第30-34页 |
| 1.3.1 叶绿体基因组与雄性不育 | 第31-32页 |
| 1.3.2 线粒体基因组与雄性不育 | 第32-34页 |
| 1.4 植物转录组学与雄性不育 | 第34-38页 |
| 1.5 植物蛋白质组学与雄性不育 | 第38-39页 |
| 1.6 植物代谢组学与雄性不育 | 第39-42页 |
| 1.6.1 能量代谢与雄性不育 | 第40页 |
| 1.6.2 物质代谢与雄性不育 | 第40-41页 |
| 1.6.3 其他代谢与雄性不育 | 第41-42页 |
| 1.7 本研究的目的意义及技术路线 | 第42-45页 |
| 1.7.1 目的意义 | 第42-43页 |
| 1.7.2 技术路线 | 第43-45页 |
| 第二章 杀雄剂SQ-1 诱导的小麦生理型雄性不育系旗叶细胞凋亡及其活性氧代谢动态 | 第45-58页 |
| 2.0 引言 | 第45-46页 |
| 2.1 材料、仪器与试剂 | 第46页 |
| 2.1.1 主要仪器与试剂 | 第46页 |
| 2.1.2 材料 | 第46页 |
| 2.2 实验方法 | 第46-49页 |
| 2.2.1 穗部形态学观察 | 第46页 |
| 2.2.2 蜡质扫描电镜观察 | 第46页 |
| 2.2.3 石蜡包埋 | 第46-47页 |
| 2.2.4 番红-固绿双重染色 | 第47页 |
| 2.2.5 TUNEL染色 | 第47-48页 |
| 2.2.6 DNA的提取、纯化与DNA ladder分析 | 第48-49页 |
| 2.2.7 生理指标测定 | 第49页 |
| 2.3 结果与分析 | 第49-56页 |
| 2.3.1 杀雄剂SQ-1 诱导小麦产生雄性不育 | 第49-51页 |
| 2.3.2 杀雄剂SQ-1 诱导产生雄性不育系旗叶形态学观察 | 第51-52页 |
| 2.3.3 杀雄剂SQ-1 诱导产生雄性不育系旗叶PCD检测 | 第52-54页 |
| 2.3.4 杀雄剂SQ-1 诱导产生雄性不育旗叶氧化应急反应 | 第54-56页 |
| 2.4 讨论 | 第56-57页 |
| 2.4.1 杀雄剂SQ-1 诱导小麦产生完全败育 | 第56页 |
| 2.4.2 杀雄剂SQ-1 造成小麦旗叶PCD过程的紊乱 | 第56页 |
| 2.4.3 杀雄剂SQ-1 使小麦旗叶处于氧化胁迫状态 | 第56-57页 |
| 2.5 小结 | 第57-58页 |
| 第三章 杀雄剂SQ-1 诱导小麦生理型雄性不育旗叶膜蛋白质变化研究 | 第58-78页 |
| 3.0 引言 | 第58-59页 |
| 3.1 材料、仪器与试剂 | 第59-60页 |
| 3.1.1 主要仪器与试剂 | 第59页 |
| 3.1.2 材料 | 第59-60页 |
| 3.2 实验方法 | 第60-63页 |
| 3.2.1 小麦旗叶净光合速率测定 | 第60页 |
| 3.2.2 小麦旗叶膜微囊的制备 | 第60页 |
| 3.2.3 膜纯度的检测 | 第60页 |
| 3.2.4 膜蛋白质的双向电泳（2-DE）分析 | 第60-61页 |
| 3.2.5 凝胶图像分析 | 第61页 |
| 3.2.6 差异蛋白质的质谱分析 | 第61-62页 |
| 3.2.7 数据库检索 | 第62页 |
| 3.2.8 生物信息学分析 | 第62-63页 |
| 3.3 结果与分析 | 第63-73页 |
| 3.3.1 旗叶净光合速率变化 | 第63-64页 |
| 3.3.2 膜纯度鉴定 | 第64页 |
| 3.3.3 差异表达膜蛋白质分析 | 第64-68页 |
| 3.3.4 差异蛋白质的鉴定及功能聚类 | 第68-70页 |
| 3.3.5 差异蛋白质的物理化学特性 | 第70-71页 |
| 3.3.6 膜蛋白质间的相互作用分析 | 第71-73页 |
| 3.4 讨论 | 第73-77页 |
| 3.4.1 光合作用相关蛋白质 | 第73-74页 |
| 3.4.2 ATP合成相关蛋白质 | 第74-75页 |
| 3.4.3 胁迫反应蛋白质 | 第75-76页 |
| 3.4.4 蛋白质代谢相关 | 第76-77页 |
| 3.5 小结 | 第77-78页 |
| 第四章 杀雄剂SQ-1 诱导的小麦生理型雄性不育系花药绒毡层和小孢子的异常发育64 | 第78-91页 |
| 4.0 引言 | 第78-79页 |
| 4.1 材料、仪器与试剂 | 第79页 |
| 4.1.1 主要仪器与试剂 | 第79页 |
| 4.1.2 材料 | 第79页 |
| 4.2 实验方法 | 第79-80页 |
| 4.2.1 小孢子发育进程观察 | 第79页 |
| 4.2.2 组织切片观察 | 第79页 |
| 4.2.3 DAPI染色 | 第79-80页 |
| 4.2.4 花药发育的透射电镜观察 | 第80页 |
| 4.2.5 TUNEL检测 | 第80页 |
| 4.2.6 FDA细胞活力检测 | 第80页 |
| 4.3 结果与分析 | 第80-89页 |
| 4.3.1 花药形态学观察 | 第80-82页 |
| 4.3.2 生理型雄性不育系绒毡层的异常发育 | 第82-84页 |
| 4.3.3 生理型雄性不育系小孢子的异常发育 | 第84-85页 |
| 4.3.4 可育系与不育系花药内程序性细胞凋亡（PCD）检测 | 第85-88页 |
| 4.3.5 花粉粒不同发育时期活力比较分析 | 第88-89页 |
| 4.4 讨论 | 第89-90页 |
| 4.4.1 杀雄剂诱导小麦生理型不育系雄性败育时期 | 第89-90页 |
| 4.4.2 杀雄剂诱导小麦生理型雄性不育系绒毡层过早降解与花粉败育的关系 | 第90页 |
| 4.5 小结 | 第90-91页 |
| 第五章 小麦生理型和遗传型雄性不育系及其可育系线粒体差异蛋白质相互作用网络的构建与分析 | 第91-112页 |
| 5.0 引言 | 第91-92页 |
| 5.1 材料、仪器与试剂 | 第92页 |
| 5.1.1 主要仪器与试剂 | 第92页 |
| 5.1.2 材料 | 第92页 |
| 5.2 实验方法 | 第92-93页 |
| 5.2.0 形态学观察 | 第92页 |
| 5.2.1 线粒体的制备 | 第92-93页 |
| 5.2.2 线粒体纯度及完整性检测 | 第93页 |
| 5.2.3 线粒体蛋白质组学分析 | 第93页 |
| 5.2.4 生理指标测定 | 第93页 |
| 5.2.5 DNA片段化检测 | 第93页 |
| 5.3 结果与分析 | 第93-104页 |
| 5.3.1 不育系与可育系育性分析 | 第93-95页 |
| 5.3.2 线粒体活性、纯度及完整性分析 | 第95页 |
| 5.3.3 不育系与可育系不同发育时期线粒体蛋白质组比较分析 | 第95-96页 |
| 5.3.4 线粒体差异表达蛋白质组比较分析 | 第96-98页 |
| 5.3.5 线粒体差异表达蛋白质MALDI-TOF-MS鉴定及功能分类 | 第98-100页 |
| 5.3.6 线粒体差异表达蛋白质间的相互作用分析 | 第100-101页 |
| 5.3.7 可育系与不育系花药内ROS比较分析 | 第101-103页 |
| 5.3.8 可育系与不育系花药内PCD检测 | 第103-104页 |
| 5.4 讨论 | 第104-110页 |
| 5.4.1 差异表达蛋白质共同干扰两不育系中线粒体电子传递过程和ATP合成 | 第104-105页 |
| 5.4.2 差异表达蛋白质增强了生理型和遗传型不育系中蛋白质的合成而抑制了蛋白质的降解 | 第105-108页 |
| 5.4.3 线粒体反向介导雄性不育的蛋白质网络模型 | 第108-110页 |
| 5.5 小结 | 第110-112页 |
| 第六章 全文结论 | 第112-114页 |
| 6.1 论文研究主要结论 | 第112-113页 |
| 6.2 论文研究创新点 | 第113-114页 |
| 参考文献 | 第114-132页 |
| 附录 | 第132-149页 |
| 致谢 | 第149-150页 |
| 作者简介 | 第150-151页 |
