| 缩略语表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 文献回顾 | 第15-25页 |
| 第一部分 血清PCT在癫痫持续状态大鼠模型中的动态变化及其组织来源 | 第25-42页 |
| 1 材料 | 第25-26页 |
| 1.1 实验动物 | 第25页 |
| 1.2 主要试剂 | 第25-26页 |
| 1.3 主要仪器 | 第26页 |
| 2 方法 | 第26-32页 |
| 2.1 癫痫持续状态大鼠模型建立 | 第26页 |
| 2.2 血清样本的收集 | 第26-27页 |
| 2.3 ELISA实验 | 第27-28页 |
| 2.4 Syber Green荧光实时定量PCR | 第28-30页 |
| 2.5 Western blot | 第30-32页 |
| 3 结果 | 第32-39页 |
| 3.1 ELISA检测癫痫持续状态大鼠模型血清中PCT的变化 | 第32-33页 |
| 3.2 ELISA检测癫痫持续状态大鼠模型血清中CRP的变化 | 第33-34页 |
| 3.3 ELISA检测癫痫持续状态大鼠模型血清中IL-6 的变化 | 第34页 |
| 3.4 ELISA检测癫痫持续状态大鼠模型血清中IL-1β 的变化 | 第34-35页 |
| 3.5 全自动生化分析仪检测癫痫持续状态大鼠模型血清中肝功能指标的变化 | 第35-36页 |
| 3.6 全自动生化分析仪检测癫痫持续状态大鼠模型血清中肾功能指标的变化 | 第36-37页 |
| 3.7 实时定量PCR检测癫痫持续状态大鼠各脏器PCT mRNA的表达 | 第37-38页 |
| 3.8 Western blot检测癫痫持续状态大鼠各组织脏器PCT表达水平的变化 | 第38-39页 |
| 4 讨论 | 第39-42页 |
| 第二部分 癫痫持续状态大鼠模型中海马PCT的动态变化及定位分布 | 第42-49页 |
| 1 材料 | 第42页 |
| 1.1 实验动物 | 第42页 |
| 1.2 主要试剂 | 第42页 |
| 1.3 主要仪器 | 第42页 |
| 2 方法 | 第42-45页 |
| 2.1 Western-Blot | 第42-43页 |
| 2.2 免疫荧光染色 | 第43-45页 |
| 3 结果 | 第45-48页 |
| 3.1 癫痫持续状态大鼠海马PCT表达动态变化 | 第45-46页 |
| 3.2 癫痫持续状态大鼠海马齿状回区星形胶质细胞PCT的表达 | 第46-48页 |
| 4 讨论 | 第48-49页 |
| 第三部分 PCT对神经元兴奋性影响及对膜GABAA受体转运的影响 | 第49-60页 |
| 1 材料 | 第49-50页 |
| 1.1 实验动物 | 第49页 |
| 1.2 主要试剂 | 第49页 |
| 1.3 主要仪器 | 第49页 |
| 1.4 电生理相关溶液配置和电极制作 | 第49-50页 |
| 1.5 SDS-PAGE电泳相关溶液配置 | 第50页 |
| 2 方法 | 第50-54页 |
| 2.1 大鼠CA1区锥体神经元全细胞膜片钳 | 第50-51页 |
| 2.2 PCT刺激HT22细胞系后膜表面GABAA receptor β2/3 表达变化 | 第51-54页 |
| 3 结果 | 第54-58页 |
| 3.1 PCT灌流对海马CA1区锥体神经元自发放电的影响 | 第54-56页 |
| 3.2 PCT灌流对双脉冲比率的影响 | 第56页 |
| 3.3 PCT灌流对海马CA1区锥体神经元诱发动作电位的影响 | 第56-57页 |
| 3.4 PCT刺激对海马神经元膜表面GABAA receptor β2/3 的作用 | 第57-58页 |
| 4 讨论 | 第58-60页 |
| 小结 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 个人简历和研究成果 | 第66-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
