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猪博卡病毒间接ELISA方法的建立及与PCV2共感染对细胞的影响

摘要第8-10页
Abstract第10-11页
缩略词表(Abbreviation)第12-13页
第1章 文献综述第13-20页
    1.1 猪博卡病毒研究进展第13-15页
        1.1.1 猪博卡病毒病原学第13-14页
        1.1.2 猪博卡病毒的流行病学研究进展第14页
        1.1.3 猪博卡病毒检测技术概况第14-15页
        1.1.4 猪博卡病毒致病性研究第15页
    1.2 猪圆环病毒2型研究进展第15-16页
        1.2.1 PCV2流行病学进展第15-16页
        1.2.2 猪圆环病毒2型致病性第16页
    1.3 猪博卡病毒与其他病毒混合感染概况第16-17页
    1.4 猪博卡病毒与机体炎症关系第17-18页
        1.4.1 炎性细胞因子概述第17页
        1.4.2 炎症风暴第17页
        1.4.3 病毒诱导的炎症反应第17-18页
    1.5 病毒感染与紧密连接研究进展第18-19页
        1.5.1 紧密连接概述第18页
        1.5.2 紧密连接蛋白与炎性因子的关系第18-19页
    1.6 研究目的和意义第19-20页
第2章 猪博卡病毒VP1蛋白主要抗原表位区的原核表达及间接ELISA方法的建立第20-35页
    2.1 试验材料第20-23页
        2.1.1 毒株和血清第20页
        2.1.2 载体和菌株第20页
        2.1.3 主要试剂及试剂盒第20-21页
        2.1.4 主要实验仪器第21页
        2.1.5 其他试剂的配制第21-23页
    2.2 试验方法第23-25页
        2.2.1 细胞抗原表位的预测第23页
        2.2.2 引物设计第23页
        2.2.3 病毒DNA提取及PCR扩增第23页
        2.2.4 原核表达质粒的构建及鉴定第23-24页
        2.2.5 重组蛋白的诱导表达、纯化第24页
        2.2.6 Western blot第24页
        2.2.7 间接ELISA方法第24页
        2.2.8 阳性血清筛选及鉴定第24页
        2.2.9 抗原最佳包被浓度和血清最佳稀释度的确定第24-25页
        2.2.10 间接ELISA阴阳性临界值的确定第25页
        2.2.11 间接ELISA检测方法的评价第25页
        2.2.12 临床血清样品检测第25页
    2.3 结果与分析第25-33页
        2.3.1 VP1基因抗原表位的预测第25-26页
        2.3.2 VP1基因克隆及重组质粒的鉴定第26-27页
        2.3.3 重组蛋白的诱导表达、纯化和Western blot分析第27-28页
        2.3.4 阳性血清的确定第28-29页
        2.3.5 重组蛋白VP1最佳包被浓度和血清最佳稀释度的确定第29-30页
        2.3.6 ELISA阴阳性临界值的确定第30页
        2.3.7 间接ELISA检测方法的评价第30-32页
        2.3.8 临床血清样本的检测第32-33页
    2.4 讨论第33-35页
第3章 PBoV与PCV2共感染对细胞影响的研究第35-53页
    3.1 试验材料第35页
    3.2 试验方法第35-41页
        3.2.1 病毒感染第35-36页
        3.2.2 细胞凋亡试验第36页
        3.2.3 PBoV间接免疫荧光试验第36页
        3.2.4 PBoV增殖检测第36-37页
        3.2.5 RT-qPCR方法测定mRNA相对表达量第37-39页
        3.2.6 IPEC-J2细胞HE染色第39-40页
        3.2.7 IPEC-J2细胞跨膜电阻试验第40页
        3.2.8 细胞因子含量检测第40页
        3.2.9 Western blot检测紧密连接蛋白表达情况第40-41页
    3.3 实验数据处理和分析第41页
    3.4 实验结果与分析第41-50页
        3.4.1 病毒PCR检测第41页
        3.4.2 感染PBoV、PCV2后PK-15细胞形态变化第41-42页
        3.4.3 PBoV在感染细胞内阳性率情况第42-43页
        3.4.4 PBoV在PK-15细胞内增殖结果第43-44页
        3.4.5 感染PBoV、PCV2后IPEC-J2细胞形态变化第44-45页
        3.4.6 流式细胞仪检测IPEC-J2感染病毒后凋亡情况第45-46页
        3.4.7 PBoV在IPEC-J2细胞内增殖情况第46页
        3.4.8 IPEC-J2感染病毒后炎性因子表达变化第46-48页
        3.4.9 病毒对IPEC-J2屏障功能的影响第48-49页
        3.4.10 病毒对IPEC-J2紧密连接蛋白表达的影响第49-50页
    3.5 讨论第50-53页
        3.5.1 PBoV和PCV2感染引起细胞病变及其增殖状况第50-51页
        3.5.2 PBoV和PCV2混合感染与细胞凋亡第51页
        3.5.3 病毒感染后炎性因子高表达第51页
        3.5.4 病毒感染对IPEC-J2细胞屏障影响第51-53页
结论第53-54页
参考文献第54-61页
在读期间发表文章第61-62页
致谢第62页

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