摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
第1章 绪论 | 第13-23页 |
1.1 研究背景 | 第13-20页 |
1.1.1 血小板的重要性 | 第13-15页 |
1.1.2 低温医学以及冷冻保存血小板的现状 | 第15-16页 |
1.1.3 血小板功能评估领域的现状 | 第16-18页 |
1.1.4 生物微电子机械系统(Bio-MEMS)领域的现状 | 第18-20页 |
1.2 课题研究内容与论文结构安排 | 第20-23页 |
1.2.1 相关生物材料热物性的研究内容 | 第20页 |
1.2.2 低温时跨膜水传输特性以及胞内冰成核概率的研究内容 | 第20页 |
1.2.3 血小板综合性功能评估的研究内容 | 第20页 |
1.2.4 各部分章节内容安排 | 第20-23页 |
第2章 微纳米生物材料导热系数测量系统 | 第23-48页 |
2.1 引言 | 第23-25页 |
2.2 材料与方法 | 第25-33页 |
2.2.1 化学药品及生物材料 | 第25页 |
2.2.2 测量系统 | 第25-26页 |
2.2.3 改进型微纳米热物性芯片的制备过程 | 第26-28页 |
2.2.4 测量原理、实验步骤及实验数据分析 | 第28-33页 |
2.3 实验结果 | 第33-46页 |
2.3.1 芯片校准实验 | 第33-34页 |
2.3.2 温度对低温保护剂导热系数的影响实验 | 第34-37页 |
2.3.3 浓度对低温保护剂导热系数的影响实验 | 第37-39页 |
2.3.4 温度和浓度对低温保护剂导热系数的共同影响实验 | 第39-43页 |
2.3.5 生物样品异质性对其导热系数的影响实验 | 第43-46页 |
2.4 本章小结 | 第46-48页 |
第3章 子宫颈癌细胞跨膜水传输能力与胞内冰形成概率的理论模拟研究 | 第48-63页 |
3.1 引言 | 第48-50页 |
3.2 材料与方法 | 第50-55页 |
3.2.1 细胞及化学药品 | 第50页 |
3.2.2 细胞培养与待测样品的准备 | 第50页 |
3.2.3 实验原理、实验步骤及实验数据分析与建模 | 第50-55页 |
3.3 实验结果 | 第55-61页 |
3.3.1 冷冻过程中的跨膜水传输实验 | 第55-57页 |
3.3.2 冷冻过程中的胞内冰形成概率实验 | 第57-61页 |
3.4 本章小结 | 第61-63页 |
第4章 高精度微纳米生物微力传感器系统 | 第63-80页 |
4.1 引言 | 第63-65页 |
4.2 材料与方法 | 第65-70页 |
4.2.1 化学药品 | 第65页 |
4.2.2 实验对象 | 第65页 |
4.2.3 实验样品的制备与处理 | 第65-66页 |
4.2.4 微纳米生物微力传感器芯片的制造及其生物活性化过程 | 第66页 |
4.2.5 实验原理、实验步骤及实验数据分析 | 第66-70页 |
4.3 实验结果 | 第70-77页 |
4.3.1 不同细胞外基质及不同激活水平对血小板收缩力的影响 | 第70-72页 |
4.3.2 准静态血小板收缩力的测量 | 第72-75页 |
4.3.3 动态血小板收缩力的测量 | 第75-77页 |
4.4 本章小结 | 第77-80页 |
第5章 总结与展望 | 第80-85页 |
5.1 本文总结 | 第80-82页 |
5.1.1 生物材料热物性部分 | 第80-81页 |
5.1.2 血小板综合性功能评估部分 | 第81-82页 |
5.2 展望 | 第82-85页 |
5.2.1 生物材料热物性部分 | 第82-83页 |
5.2.2 血小板综合性功能评估部分 | 第83-85页 |
参考文献 | 第85-99页 |
致谢 | 第99-101页 |
在读期间发表的学术论文与取得的其他所受奖励 | 第101-103页 |
在读期间所受奖励 | 第103页 |