| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第12-50页 |
| 1.1 引言 | 第12-13页 |
| 1.2 分子影像学成像方法简介 | 第13-14页 |
| 1.2.1 可见光成像 | 第13页 |
| 1.2.2 MRI | 第13页 |
| 1.2.3 CT | 第13页 |
| 1.2.4 PET | 第13-14页 |
| 1.2.5 SPECT | 第14页 |
| 1.2.6 US | 第14页 |
| 1.2.7 多模态成像 | 第14页 |
| 1.3 磁性纳米颗粒 | 第14-25页 |
| 1.3.1 磁性纳米颗粒的特性 | 第15-17页 |
| 1.3.2 磁性纳米颗粒的合成方法介绍 | 第17-22页 |
| 1.3.2.1 共沉淀法 | 第17页 |
| 1.3.2.2 高温热分解法 | 第17-20页 |
| 1.3.2.3 微乳液法 | 第20页 |
| 1.3.2.4 水热法 | 第20-21页 |
| 1.3.2.5 溶剂热法 | 第21页 |
| 1.3.2.6 其他合成方法 | 第21-22页 |
| 1.3.3 磁性纳米颗粒的表面修饰方法介绍 | 第22-23页 |
| 1.3.3.1 配体交换法 | 第22页 |
| 1.3.3.2 配体包裹法 | 第22-23页 |
| 1.3.4 磁性纳米颗粒的体内分布 | 第23-25页 |
| 1.3.4.1 被动靶向 | 第23-24页 |
| 1.3.4.2 主动靶向 | 第24-25页 |
| 1.4 磁性纳米颗粒在MRI中的应用 | 第25-44页 |
| 1.4.1 磁共振成像基本原理 | 第25-26页 |
| 1.4.2 磁共振成像造影剂及其弛豫效能 | 第26-27页 |
| 1.4.3 超顺磁性铁氧化物纳米颗粒作为T_2造影剂 | 第27-33页 |
| 1.4.3.1 T_2和T_2~* | 第28-29页 |
| 1.4.3.2 粒径对T_2弛豫的影响 | 第29-30页 |
| 1.4.3.3 形状对T_2弛豫的影响 | 第30-31页 |
| 1.4.3.4 组成对T_2弛豫的影响 | 第31-32页 |
| 1.4.3.5 聚集状态对T_2弛豫的影响 | 第32-33页 |
| 1.4.4 基于Gd~(3+)的分子型T_1造影剂及弛豫理论 | 第33-35页 |
| 1.4.5 基于顺磁性金属离子的无机纳米颗粒作为T_1造影剂 | 第35-37页 |
| 1.4.5.1 粒径对T_1弛豫的影响 | 第35-36页 |
| 1.4.5.2 表面状态对T_1弛豫的影响 | 第36-37页 |
| 1.4.5.3 组成对T_1弛豫的影响 | 第37页 |
| 1.4.6 磁性纳米颗粒作为T_1-T_2双模MRI造影剂 | 第37-42页 |
| 1.4.6.1 USPIOs用作T_1-T_2双模MRI造影剂 | 第37-38页 |
| 1.4.6.2 超短TE(UTE)序列用于T_1-T_2双模MRI | 第38页 |
| 1.4.6.3 铁钴合金纳米颗粒用作T_1-T_2双模MRI造影剂 | 第38页 |
| 1.4.6.4 基于铁氧化物纳米颗粒的复合材料用作T_1-T_2双模MRI造影剂 | 第38-42页 |
| 1.4.7 磁性纳米颗粒作为MRI造影剂的应用 | 第42-44页 |
| 1.4.7.1 肿瘤靶向性磁共振造影剂 | 第42页 |
| 1.4.7.2 体内细胞示踪 | 第42-43页 |
| 1.4.7.3 磁性弛豫开关 | 第43-44页 |
| 1.5 本论文的选题思路及研究内容 | 第44-50页 |
| 1.5.1 MRI在肿瘤诊断中发挥极其重要的作用 | 第44-45页 |
| 1.5.2 T_1-T_2双模MRI提高诊断的精确性 | 第45页 |
| 1.5.3 铁组分和钆组分的结合为研制新型双模造影剂提供了新思路 | 第45-46页 |
| 1.5.4 增大T_2造影剂的有效半径可显著提高其T_2造影能力 | 第46-47页 |
| 1.5.5 位于纳米颗粒表层的Gd~(3+)对质子弛豫有主要贡献 | 第47页 |
| 1.5.6 理想的双模造影剂结构 | 第47页 |
| 1.5.7 本论文的主要研究内容及意义 | 第47-50页 |
| 第2章 新型磁共振T_1-T_2双模造影剂：核壳结构Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体 | 第50-86页 |
| 2.1 引言 | 第50-51页 |
| 2.2 实验材料 | 第51-53页 |
| 2.2.1 生化试剂 | 第51-52页 |
| 2.2.2 细胞系及培养试剂 | 第52页 |
| 2.2.3 实验动物 | 第52页 |
| 2.2.4 实验仪器 | 第52-53页 |
| 2.2.5 实验耗材 | 第53页 |
| 2.3 实验方法 | 第53-60页 |
| 2.3.1 油酸铁油酸钆混合前体物合成 | 第53-54页 |
| 2.3.2 核壳结构Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体合成 | 第54页 |
| 2.3.3 油酸铁前体物合成 | 第54页 |
| 2.3.4 Fe_3O_4纳米立方体合成 | 第54页 |
| 2.3.5 超小型Gd_2O_3纳米颗粒合成 | 第54-55页 |
| 2.3.6 多巴胺包覆的纳米立方体的制备 | 第55页 |
| 2.3.7 PVP包覆的Gd_2O_3纳米颗粒的制备 | 第55页 |
| 2.3.8 DMSA包覆的Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体的制备 | 第55页 |
| 2.3.9 DHCA包覆的Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体的制备 | 第55页 |
| 2.3.10 实验表征 | 第55-56页 |
| 2.3.11 1.5T磁共振仿体实验 | 第56-57页 |
| 2.3.12 9.4T磁共振仿体实验 | 第57页 |
| 2.3.13 细胞培养 | 第57页 |
| 2.3.14 毒性实验 | 第57-58页 |
| 2.3.15 细胞形态观察 | 第58页 |
| 2.3.16 组织切片制备及H&E(苏木精-伊红)染色 | 第58页 |
| 2.3.17 3.0T体内磁共振成像 | 第58-59页 |
| 2.3.18 9.4T体内磁共振成像 | 第59页 |
| 2.3.19 纳米颗粒表面连接叶酸 | 第59-60页 |
| 2.3.20 普鲁士蓝染色细胞 | 第60页 |
| 2.3.21 普鲁士蓝染色组织 | 第60页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第60-86页 |
| 2.4.1 核壳结构Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体的合成与表征 | 第60-69页 |
| 2.4.1.1 核壳结构Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体的合成 | 第60页 |
| 2.4.1.2 核壳结构的Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体的形成机理 | 第60-61页 |
| 2.4.1.3 核壳结构的Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体的形貌特征 | 第61-62页 |
| 2.4.1.4 核壳结构Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体的结构鉴定 | 第62-63页 |
| 2.4.1.5 核壳结构的Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体的组成鉴定 | 第63-66页 |
| 2.4.1.6 多巴胺修饰核壳结构Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体 | 第66-68页 |
| 2.4.1.7 核壳结构Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体的磁学性质 | 第68-69页 |
| 2.4.1.8 小结 | 第69页 |
| 2.4.2 Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体作为T_1-T_2双模磁共振造影剂 | 第69-78页 |
| 2.4.2.1 Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体在1.5 T下的弛豫效能 | 第69-73页 |
| 2.4.2.2 Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体具有良好的生物相容性 | 第73-75页 |
| 2.4.2.3 Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体可以作为T_1-T_2双模造影剂用于体内成像 | 第75-78页 |
| 2.4.2.4 小结 | 第78页 |
| 2.4.3 Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体在9.4 T下T_2造影增强能力起主导作用 | 第78-81页 |
| 2.4.3.1 Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体在9.4 T下的弛豫效能 | 第78-79页 |
| 2.4.3.2 Fe_3O_4/Gd_2O_3纳米立方体在9.4 T下的体内成像 | 第79-81页 |
| 2.4.3.3 小结 | 第81页 |
| 2.4.4 讨论及展望 | 第81-84页 |
| 2.4.5 结论 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-108页 |
| 致谢 | 第108-110页 |
| 缩略语 | 第110-112页 |
| 附录 | 第112页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的研究成果 | 第112页 |
| 攻读博士学位期间获得的学术奖励 | 第112页 |
| 攻读博士学位期间参加的学术会议 | 第112页 |
