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猪戊型肝炎病毒抗原性及诺如病毒与宿主蛋白互作的研究

摘要第6-9页
Abstract第9-12页
第一章 文献综述第18-46页
    1.1 戊型肝炎病毒研究进展第18-36页
        1.1.1 戊型肝炎病毒危害第18页
        1.1.2 HEV发现及分类第18-21页
        1.1.3 HEV进化史第21-22页
        1.1.4 HEV基因组结构第22-25页
        1.1.5 衣壳蛋白自组装第25-27页
        1.1.6 中和表位和疫苗第27页
        1.1.7 戊型肝炎流行情况第27-30页
        1.1.8 HEV的物种间传播第30-32页
        1.1.9 HEV传播途径第32-34页
        1.1.10 HEV实验室诊断第34-36页
    1.2 诺如病毒研究进展第36-46页
        1.2.1 诺如病毒发现及危害第36-37页
        1.2.2 诺如病毒基因组第37-38页
        1.2.3 诺如病毒感染及致病第38-40页
        1.2.4 病毒生命周期第40-41页
        1.2.5 病毒结构蛋白第41-42页
        1.2.6 VPg蛋白第42-43页
        1.2.7 诺如病毒、宿主与微生物之间的互作第43-45页
        1.2.8 鼠诺如病毒第45-46页
第二章 山东地区猪戊型肝炎病毒基因组序列特征分析及感染率调查第46-63页
    2.1 研究背景与意义第46页
    2.2 实验材料第46-47页
        2.2.1 胆汁样品第46页
        2.2.2 血清样品第46-47页
    2.3 实验仪器与试剂第47-48页
        2.3.1 实验试剂第47页
        2.3.2 主要仪器第47-48页
    2.4 方法第48-55页
        2.4.1 RT-nPCR检测胆汁或血清样品中的猪HEV orf2基因第48-49页
        2.4.2 猪HEV毒株完整基因组序列的扩增第49-51页
        2.4.3 测序及进化分析第51-52页
        2.4.4 提交分离鉴定的HEV序列到Gen Bank第52页
        2.4.5 猪HEV ORF2重组蛋白的制备第52-55页
        2.4.6 i-ELISA第55页
        2.4.7 统计分析第55页
    2.5 实验结果第55-61页
        2.5.1 猪胆汁样品中猪HEV检测结果第55-56页
        2.5.2 猪HEV orf 2 基因序列比对结果第56-57页
        2.5.3 山东株猪HEV:CHN-SD-sHEV第57-58页
        2.5.4 重组蛋白表达纯化第58-59页
        2.5.5 确定i-ELISA cut-off值第59页
        2.5.6 山东地区猪HEV感染率研究第59-61页
    2.6 讨论第61-62页
    2.7 小结第62-63页
第三章 两个戊型肝炎病毒共有抗原表位的鉴定第63-81页
    3.1 研究背景及意义第63-64页
    3.2 实验材料第64-65页
        3.2.1 血清样品第64页
        3.2.2 多肽第64页
        3.2.3 单克隆抗体第64页
        3.2.4 不同种属HEV毒株第64-65页
    3.3 实验仪器与试剂第65页
        3.3.1 实验试剂第65页
        3.3.2 主要仪器第65页
    3.4 实验方法第65-68页
        3.4.1 噬菌体展示技术筛选抗原表位第65-66页
        3.4.2 合成多肽第66页
        3.4.3 制备重组蛋白第66-67页
        3.4.4 间接ELISA第67页
        3.4.5 Western Blot第67页
        3.4.6 抗原表位与不同种属抗血清交叉反应第67页
        3.4.7 软件计算分析第67-68页
        3.4.8 免疫保护性分析第68页
    3.5 实验结果第68-79页
        3.5.1 两株禽单克隆抗体与猪HEV衣壳蛋白具有交叉反应性第68-69页
        3.5.2 抗原表位噬菌体生物淘选结果第69-70页
        3.5.3 抗原表位关键氨基酸的鉴定第70-73页
        3.5.4 共有抗原表位与抗禽、抗猪或抗人HEV阳性血清交叉反应第73-74页
        3.5.5 抗原表位保守性第74-75页
        3.5.6 抗原表位空间定位第75-76页
        3.5.7 抗原表位 3E8和 1B5对鸡没有保护性第76-79页
    3.6 讨论第79-80页
    3.7 小结第80-81页
第四章 宿主细胞与诺如病毒VPg互作蛋白的鉴定第81-101页
    4.1 背景与意义第81页
    4.2 实验目的与研究路线第81-82页
    4.3 实验试剂与仪器第82-83页
        4.3.1 实验试剂第82-83页
        4.3.2 实验器材第83页
    4.4 实验方法第83-88页
        4.4.1 序列比对第83页
        4.4.2 构建GFP重组质粒第83-84页
        4.4.3 细胞同位素标记与培养第84页
        4.4.4 细胞转染第84-86页
        4.4.5 制备IP样品第86页
        4.4.6 免疫共沉淀第86页
        4.4.7 质谱检测第86-87页
        4.4.8 数据分析第87页
        4.4.9 验证IP结果第87页
        4.4.10 YBX1和G3BP1敲低对病毒感染和复制的影响第87页
        4.4.11 qPCR检测病毒RNA含量第87-88页
    4.5 实验结果第88-99页
        4.5.1 HuNoV和MNV VPg基因同源性分析并构建GFP标签重组质粒第88-89页
        4.5.2 GFP亲和纯化系统验证第89-90页
        4.5.3 质谱数据评估第90-91页
        4.5.4 筛选质谱获得与VPg相互作用蛋白第91-93页
        4.5.5 互作蛋白网络分析第93-95页
        4.5.6 宿主细胞中与VPg互作蛋白分析第95-96页
        4.5.7 验证互作靶蛋白第96-97页
        4.5.8 YBX1和G3BP1功能探究第97-99页
    4.6 讨论第99-100页
    4.7 本章小结第100-101页
第五章 鼠诺如病毒VP2蛋白与宿主细胞互作蛋白的鉴定第101-123页
    5.1 研究背景与意义第101-102页
    5.2 研究目的与研究路线第102-103页
        5.2.1 研究目的第102页
        5.2.2 研究路线第102-103页
    5.3 实验试剂与仪器第103页
        5.3.1 实验试剂第103页
        5.3.2 实验器材第103页
    5.4 实验方法第103-107页
        5.4.1 细胞培养第103-104页
        5.4.2 同位素标记BV2细胞第104页
        5.4.3 拯救VP2-FLAG重组病毒第104页
        5.4.4 细胞转染第104页
        5.4.5 测定病毒滴度第104页
        5.4.6 纯化浓缩病毒第104-105页
        5.4.7 病毒感染细胞第105-106页
        5.4.8 FLAG亲和纯化第106页
        5.4.9 质谱检测第106页
        5.4.10 数据分析第106页
        5.4.11 制备转染VPg-linked RNA第106-107页
        5.4.12 免疫荧光共定位第107页
    5.5 实验结果第107-121页
        5.5.1 获得高滴度重组病毒第107-108页
        5.5.2 FLAG亲和纯化效果验证第108-109页
        5.5.3 质谱检测结果评估第109-110页
        5.5.4 设定质谱数据阳性判定值第110-111页
        5.5.5 宿主细胞中与VP2互作的靶蛋白第111-114页
        5.5.6 验证互作靶蛋白第114-115页
        5.5.7 免疫荧光共定位分析VP2在病毒代谢中细胞定位第115-118页
        5.5.8 宿主细胞中与Ns4或VP2互作靶蛋白分析第118-120页
        5.5.9 宿主细胞中与Ns1/2 或VP2互作靶蛋白分析第120-121页
    5.6 讨论第121-122页
    5.7 本章小结第122-123页
全文总结第123-124页
研究创新点第124-125页
参考文献第125-147页
致谢第147-149页
作者简介第149页

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