金针菇SF-07菌株多糖的提取、结构与抗氧化活性分析
| 中文摘要 | 第1-12页 |
| 英文摘要 | 第12-15页 |
| 1 前言 | 第15-21页 |
| ·金针菇生物特性 | 第15-16页 |
| ·金针菇形态特征 | 第15页 |
| ·金针菇生长条件 | 第15页 |
| ·金针菇栽培方法 | 第15-16页 |
| ·固体栽培 | 第15页 |
| ·液体深层发酵 | 第15-16页 |
| ·金针菇活性成分 | 第16-17页 |
| ·金针菇多糖 | 第16页 |
| ·火菇素 | 第16页 |
| ·免疫调节蛋白 | 第16-17页 |
| ·多糖的提取工艺及分离纯化 | 第17页 |
| ·多糖的提取工艺 | 第17页 |
| ·多糖的分离纯化 | 第17页 |
| ·多糖的化学修饰 | 第17-18页 |
| ·酶解和酸解 | 第17-18页 |
| ·硫酸化 | 第18页 |
| ·乙酰化 | 第18页 |
| ·多糖结构特性的测定方法 | 第18-19页 |
| ·傅立叶红外色谱 | 第18页 |
| ·气相色谱法 | 第18-19页 |
| ·高效液相色谱 | 第19页 |
| ·核磁共振 | 第19页 |
| ·多糖的生理功能 | 第19-20页 |
| ·抗氧化 | 第19-20页 |
| ·抗肿瘤 | 第20页 |
| ·免疫调节 | 第20页 |
| ·降血糖、降血压、降血脂及保肝护肝作用 | 第20页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-33页 |
| ·供试菌种 | 第21页 |
| ·培养基 | 第21-22页 |
| ·斜面培养基 | 第21页 |
| ·固体培养基 | 第21页 |
| ·深层液体种子培养 | 第21页 |
| ·深层液体发酵培养基 | 第21-22页 |
| ·主要仪器设备及试剂 | 第22-23页 |
| ·主要仪器设备 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22-23页 |
| ·试验方法 | 第23-33页 |
| ·金针菇的液体培养 | 第23页 |
| ·金针菇多糖的提取及含量测定 | 第23-24页 |
| ·胞内多糖的提取 | 第23页 |
| ·胞外多糖的提取 | 第23页 |
| ·多糖含量测定 | 第23-24页 |
| ·金针菇胞内多糖和胞外多糖的提取优化 | 第24-26页 |
| ·胞内多糖Plackett-Burman试验 | 第24-25页 |
| ·胞内多糖响应面设计 | 第25页 |
| ·胞外多糖Plackett-Burman试验 | 第25-26页 |
| ·胞外多糖响应面设计 | 第26页 |
| ·金针菇多糖的酸解和酶解 | 第26-27页 |
| ·金针菇多糖的酶解 | 第26页 |
| ·金针菇多糖的酸解 | 第26-27页 |
| ·金针菇多糖的分离纯化 | 第27页 |
| ·去蛋白 | 第27页 |
| ·多糖组分分离及纯化 | 第27页 |
| ·金针菇多糖的结构分析 | 第27-28页 |
| ·多糖组分的紫外分析 | 第27页 |
| ·多糖的分子量测定 | 第27-28页 |
| ·多糖组分的红外光谱分析 | 第28页 |
| ·多糖的单糖组分分析 | 第28页 |
| ·金针菇胞内多糖和胞外多糖的体外抗氧化 | 第28-30页 |
| ·还原力的测定 | 第28-29页 |
| ·羟基自由基（·OH）清除能力的测定 | 第29页 |
| ·超氧阴离子自由基（O_2~-·）清除能力测定 | 第29页 |
| ·DPPH自由基清除能力的测定 | 第29-30页 |
| ·金针菇胞内多糖和胞外多糖的体内抗氧化 | 第30-33页 |
| ·动物试验 | 第30页 |
| ·GSH-Px活性测定 | 第30-31页 |
| ·SOD活性测定 | 第31-32页 |
| ·过氧化氢酶（CAT）活性测定 | 第32页 |
| ·MDA含量 | 第32页 |
| ·总抗氧化能力（T-AOC）活性测定 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-62页 |
| ·金针菇胞内多糖的提取优化 | 第33-37页 |
| ·PB试验 | 第33-34页 |
| ·响应面试验 | 第34-37页 |
| ·IPS优化因素选取 | 第34-35页 |
| ·IPS响应面数据分析 | 第35-37页 |
| ·金针菇胞外多糖的提取优化 | 第37-41页 |
| ·PB试验 | 第37-38页 |
| ·响应面试验 | 第38-41页 |
| ·EPS优化因素的选取 | 第38-39页 |
| ·EPS响应面数据分析 | 第39-41页 |
| ·金针菇多糖的分离纯化 | 第41-44页 |
| ·DEAE-52纤维素分离 | 第41-43页 |
| ·葡聚糖G-100凝胶分离 | 第43-44页 |
| ·金针菇多糖结构分析 | 第44-49页 |
| ·多糖组分的紫外光谱分析 | 第44页 |
| ·多糖分子量结果分析 | 第44-45页 |
| ·金针菇多糖红外光谱结果分析 | 第45-46页 |
| ·胞内多糖组分的结构分析 | 第45页 |
| ·胞外多糖组分的结构测定 | 第45-46页 |
| ·金针菇多糖的单糖组成分析 | 第46-49页 |
| ·混合标准样品的气相色谱图分析 | 第46-47页 |
| ·胞内多糖各分组的单糖组成 | 第47-48页 |
| ·胞外多糖各组分的单糖组成 | 第48-49页 |
| ·金针菇胞内多糖及其组分体外抗氧化活性 | 第49-52页 |
| ·IPS及其组分的还原力 | 第50页 |
| ·IPS及其组分对羟基自由基的清除能力 | 第50-51页 |
| ·IPS及其组分对超氧阴离子的清除能力 | 第51-52页 |
| ·IPS及其组分对DPPH的清除能力 | 第52页 |
| ·金针菇胞外多糖及其组分体外抗氧化活性 | 第52-55页 |
| ·EPS及其组分的还原力 | 第52-53页 |
| ·EPS及其组分对羟基自由基的清除能力 | 第53-54页 |
| ·EPS及其组分对超氧阴离子的清除能力 | 第54页 |
| ·EPS及其组分对DPPH的清除能力 | 第54-55页 |
| ·金针菇胞内多糖体内抗氧化活性 | 第55-58页 |
| ·IPS对小鼠组织和全血中GSH-Px活性的影响 | 第55-56页 |
| ·IPS对小鼠组这和全血中SOD活性的影响 | 第56页 |
| ·IPS对小鼠组织和全血中CAT活性的影响 | 第56-57页 |
| ·IPS对小鼠组织和全血中MDA含量的影响 | 第57页 |
| ·IPS对小鼠组织和全血中T-AOC活性的影响 | 第57-58页 |
| ·金针菇胞外多糖体内抗氧化活性 | 第58-62页 |
| ·EPS对小鼠组织和全血中GSH-Px活性的影响 | 第58-59页 |
| ·EPS对小鼠组织和全血中SOD活性的影响 | 第59页 |
| ·EPS对小鼠组织和全血中CAT活性的影响 | 第59-60页 |
| ·EPS对小鼠组织和全血中MDA含量的影响 | 第60页 |
| ·EPS对小鼠组织和全血中T-AOC活性的影响 | 第60-62页 |
| 4 讨论 | 第62-64页 |
| 5 结论 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第72页 |
