缩略词表 | 第1-5页 |
摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-14页 |
第一章 绪论 | 第14-26页 |
一、骨质疏松的研究进展 | 第14-17页 |
1. 骨质疏松症的概念 | 第14页 |
2. 骨质疏松症的分类 | 第14页 |
3. 绝经后骨质疏松症的研究进展 | 第14-15页 |
4. 治疗骨质疏松的药物研究进展 | 第15-17页 |
·促骨形成药 | 第16页 |
·抗骨吸收药 | 第16页 |
·补充骨矿物药 | 第16-17页 |
·中药治疗骨质疏松 | 第17页 |
二、药物防治骨质疏松的研究方法 | 第17-22页 |
1. 细胞模型 | 第17-19页 |
·成骨细胞培养 | 第17-18页 |
·破骨细胞培养 | 第18-19页 |
·骨髓基质细胞培养 | 第19页 |
2. 骨质疏松动物模型的构建 | 第19-20页 |
·原发性骨质疏松动物模型 | 第19-20页 |
·继发性骨质疏松症模型 | 第20页 |
3. 骨质疏松动物模型的评价指标 | 第20-22页 |
·骨代谢生化指标 | 第20-21页 |
·骨密度测量 | 第21-22页 |
·骨生物力学特性 | 第22页 |
·骨组织微结构 | 第22页 |
三、杜仲籽研究概况 | 第22-26页 |
1. 杜仲籽资源现状 | 第23页 |
2. 杜仲籽的活性成分 | 第23页 |
3. 杜仲籽的药理作用 | 第23-26页 |
·抗骨质疏松作用 | 第24页 |
·降血脂作用 | 第24页 |
·抗氧化作用 | 第24页 |
·提高记忆力作用 | 第24-25页 |
·护肝解毒作用 | 第25页 |
·抗菌抗病毒作用 | 第25页 |
·抗炎镇痛作用 | 第25-26页 |
第二章 杜仲籽提取物提取工艺优化研究 | 第26-39页 |
一、杜仲籽脱脂工艺研究 | 第26-30页 |
1. 材料与仪器 | 第26页 |
·原料与试剂 | 第26页 |
·主要仪器 | 第26页 |
2. 实验方法 | 第26-27页 |
·不同液料比对杜仲籽脱脂率的影响 | 第26-27页 |
·不同浸泡时间对杜仲籽脱脂率的影响 | 第27页 |
·不同超声功率对杜仲籽脱脂率的影响 | 第27页 |
·不同超声时间对杜仲籽脱脂率的影响 | 第27页 |
3. 结果分析 | 第27-28页 |
·不同液料比对杜仲籽脱脂率的影响 | 第27页 |
·不同浸泡时间对杜仲籽脱脂率的影响 | 第27-28页 |
·不同超声功率对杜仲籽脱脂率的影响 | 第28页 |
·不同超声时间对杜仲籽脱脂率的影响 | 第28页 |
4. 正交试验结果分析 | 第28-29页 |
5. 讨论 | 第29-30页 |
·溶剂的选择 | 第29-30页 |
·实验方法设计 | 第30页 |
·小结 | 第30页 |
二、桃叶珊瑚苷的提取工艺研究 | 第30-37页 |
1. 材料与仪器 | 第30-31页 |
·原料与试剂 | 第30-31页 |
·主要仪器 | 第31页 |
2. 实验方法 | 第31-33页 |
·不同乙醇浓度对AU提取率的影响试验 | 第31页 |
·不同提取温度对AU提取率的影响试验 | 第31页 |
·不同液料比对AU提取率的影响试验 | 第31-32页 |
·不同超声功率对AU提取率的影响试验 | 第32页 |
·不同超声时间对AU提取率的影响试验 | 第32页 |
·不同浸泡时间对AU提取率的影响试验 | 第32页 |
·不同提取次数对AU提取率的影响试验 | 第32页 |
·AU含量测定方法 | 第32-33页 |
3. 结果 | 第33-36页 |
·不同乙醇浓度对AU提取率的影响 | 第33页 |
·不同提取温度对AU提取率的影响 | 第33-34页 |
·不同液料比对AU提取率的影响 | 第34页 |
·不同超声功率对AU提取率的影响 | 第34页 |
·不同超声时间对AU提取率的影响 | 第34-35页 |
·不同浸泡时间对AU提取率的影响 | 第35页 |
·不同提取次数对AU提取率的影响 | 第35-36页 |
4. 正交试验结果分析 | 第36-37页 |
三、杜仲籽提取物的分离纯化 | 第37-39页 |
1. 杜仲籽脱脂 | 第37-38页 |
2. ESE的提取分离 | 第38-39页 |
·ESE提取分离方法 | 第38页 |
·ESE中AU的含量测定 | 第38页 |
·ESE中的AU测定结果 | 第38-39页 |
第三章 杜仲籽总提取物对成骨细胞增殖及分化、矿化的作用 | 第39-51页 |
一、仪器与试剂 | 第39-40页 |
1. 主要仪器 | 第39-40页 |
2. 试剂与耗材 | 第40页 |
二、成骨细胞的原代培养基鉴定 | 第40-44页 |
1. 试验动物 | 第40-41页 |
2. 主要试剂配制方法 | 第41页 |
3. 试验方法 | 第41-42页 |
·原代成骨细胞培养 | 第41-42页 |
·碱性磷酸酶染色 | 第42页 |
·茜素红染色法 | 第42页 |
4. 结果分析 | 第42-44页 |
·成骨细胞形态学观察 | 第42-43页 |
·碱性磷酸酶染色结果 | 第43-44页 |
·茜素红染色结果 | 第44页 |
三、ESE对成骨细胞增殖、分化及矿化的影响 | 第44-51页 |
1. 主要试剂配制 | 第44页 |
2. 供试药物配制 | 第44页 |
3. 试验方法 | 第44-46页 |
·MTT试验 | 第44-45页 |
·碱性磷酸酶测定 | 第45页 |
·矿化结节染色 | 第45页 |
·数据统计 | 第45-46页 |
4. 结果分析 | 第46-51页 |
·ESE对成骨细胞增殖能力的作用影响 | 第46-48页 |
·AU与ESE对成骨细胞ALP分泌的影响 | 第48-49页 |
·AU与ESE对成骨细胞矿化作用的影响 | 第49-50页 |
·小结 | 第50-51页 |
第四章 杜仲籽提取物对去势大鼠骨质疏松的防治作用研究 | 第51-74页 |
一、材料与仪器 | 第51-52页 |
1. 主要仪器 | 第51-52页 |
2. 主要试剂与耗材 | 第52页 |
3. 试验药物 | 第52页 |
4. 实验动物 | 第52页 |
二、实验方法 | 第52-59页 |
1. 动物模型的建立 | 第52-53页 |
2. 给药 | 第53页 |
3. 样本的收集与处理 | 第53-54页 |
·血清样本收集 | 第53页 |
·尿样收集 | 第53页 |
·脏器收集 | 第53页 |
·骨组织样本收集 | 第53-54页 |
4. 血清、尿液生化指标检测 | 第54页 |
5. 骨代谢标志物检测 | 第54-56页 |
·血清中OC检测 | 第54-55页 |
·血清中OPG检测 | 第55页 |
·血清中RANKL检测 | 第55-56页 |
6. ELISA测定血清中雌二醇含量 | 第56-57页 |
7. 骨密度检测 | 第57页 |
8. 骨生物力学检测 | 第57-58页 |
·股骨重量、长度、直径测量 | 第57页 |
·骨压碎力检测 | 第57页 |
·骨折力检测 | 第57-58页 |
9. Micro CT分析 | 第58页 |
10. 骨组织硬切片染色 | 第58-59页 |
·脱水 | 第58页 |
·浸塑 | 第58-59页 |
·包埋 | 第59页 |
·切片 | 第59页 |
·甲苯胺蓝染色 | 第59页 |
11. 数据统计分析 | 第59页 |
三、结果 | 第59-72页 |
1. ESE对OVX大鼠体重的影响 | 第59页 |
2. ESE对OVX大鼠脏器指数的影响 | 第59-61页 |
3. ESE对OVX大鼠血液生化指标的影响 | 第61-62页 |
4. ESE对OVX大鼠尿生化指标的影响 | 第62页 |
5. ESE对OVX大鼠骨代谢标志物的影响 | 第62-64页 |
·ESE对OVX大鼠OC的影响 | 第62-63页 |
·ESE对OVX大鼠OPG的影响 | 第63-64页 |
·ESE对OVX大鼠RANKL的影响 | 第64页 |
6. ESE对OVX大鼠雌激素水平的影响 | 第64-65页 |
7. ESE对OVX大鼠骨密度的影响 | 第65-66页 |
8. ESE对OVX大鼠骨生物力学特性的影响 | 第66-69页 |
·ESE对OVX大鼠股骨重量、长度、直径的影响 | 第66-67页 |
·ESE对OVX大鼠骨压碎力的影响 | 第67页 |
·ESE对OVX大鼠股骨骨折力的影响 | 第67-69页 |
9. ESE对OVX大鼠股骨骨微结构的影响 | 第69-70页 |
10. OVX大鼠骨组织硬切片染色 | 第70-72页 |
四、讨论 | 第72-74页 |
1. ESE对大鼠骨代谢标志物的影响 | 第72页 |
2. ESE对大鼠雌激素水平的影响 | 第72页 |
3. ESE对大鼠骨密度的影响 | 第72-73页 |
4. ESE对大鼠骨生物力学特性的影响 | 第73页 |
5. ESE对大鼠股骨组织微结构的影响 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-82页 |
攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第82-83页 |
致谢 | 第83页 |