| 中文摘要 | 第1-15页 |
| ABSTRACT | 第15-19页 |
| 符号说明 | 第19-21页 |
| 前言 | 第21-35页 |
| 1 血管内皮生长因子受体 | 第21-23页 |
| ·VEGF的分类、调节与功能 | 第21-23页 |
| ·以VEGFR-2为驶点的酪氣酸激酶抑制剂 | 第23页 |
| 2 药物蹄选模型 | 第23-24页 |
| 3 生物色谱法 | 第24-25页 |
| 4 细胞膜色谱法 | 第25-27页 |
| ·细胞膜与药物的相互作用 | 第25页 |
| ·细胞膜色谱法的提出 | 第25-26页 |
| ·细胞膜色谱法的技术特点 | 第26-27页 |
| 5 生物载体材料 | 第27-29页 |
| ·有机高分子载体材料 | 第28页 |
| ·无机载体材料 | 第28页 |
| ·复合载体材料 | 第28-29页 |
| 6 本论文选题的目的与研究内容 | 第29-31页 |
| 7 本课题的创新点 | 第31页 |
| 参考文献 | 第31-35页 |
| 第一章 两种复合材料的制备 | 第35-55页 |
| 1 仪器与试剂 | 第37-38页 |
| ·仪器 | 第37页 |
| ·材料 | 第37-38页 |
| 2 实验方法 | 第38-42页 |
| ·CTS/SiO_2杂化材料的制备及性能研究 | 第38-40页 |
| ·壳聚糖脱乙酰度的测定 | 第38页 |
| ·SiO_2的硅羟基含量测定 | 第38页 |
| ·CTS/SiO_2杂化材料的制备方法 | 第38-39页 |
| ·CTS/SiO_2杂化材料的表征 | 第39-40页 |
| ·ALG/SiO_2杂化材料的制备及性能 | 第40-41页 |
| ·海藻酸钠与SiO_2的制备比例考察 | 第40页 |
| ·CaCl_2浓度对ALG/SiO_2复合材料质量溶胀率的影响 | 第40页 |
| ·ALG/SiO_2杂化材料的表征 | 第40-41页 |
| ·两种杂化材料的性能考察 | 第41-42页 |
| ·固定化明胶酶键合率 | 第41页 |
| ·最佳活性条件下测定求固定化明胶酶K_m | 第41-42页 |
| 3 结果与讨论 | 第42-53页 |
| ·CTS/SiO_2杂化材料的制备及性能研究 | 第42-49页 |
| ·壳聚糖脱乙酰度的测定 | 第42-43页 |
| ·SiO_2的硅羟基含量测定 | 第43页 |
| ·CTS/SiO_2杂化材料的制备方法 | 第43-45页 |
| ·CTS/SiO_2杂化材料的表征 | 第45-49页 |
| ·ALG/SiO_2杂化材料的制备及性能 | 第49-51页 |
| ·海藻酸钠与SiO_2的制备比例考察 | 第49页 |
| ·CaCl_2浓度对ALG/SiO_2复合材料溶胀率的影响 | 第49页 |
| ·ALG/SiO_2杂化材料的表征 | 第49-51页 |
| ·两种杂化材料的性能考察 | 第51-53页 |
| ·固定化明胶酶键合率 | 第52页 |
| ·最佳活性条件下测定求固定化明胶酶K_m | 第52-53页 |
| 4 小结 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-55页 |
| 第二章 高表达VEGFR-2细胞的筛选及细胞膜制备 | 第55-67页 |
| 1 仪器与材料 | 第56-57页 |
| ·仪器 | 第56页 |
| ·材料 | 第56-57页 |
| 2 实验方法 | 第57-62页 |
| ·实验溶液的配制 | 第57-58页 |
| ·细胞的培养 | 第58-59页 |
| ·高表达VEGFR-2细胞的筛选 | 第59-60页 |
| ·U251细胞膜的制备条件的考察 | 第60-62页 |
| ·细胞膜的分离提取 | 第60-61页 |
| ·破碎方法的考察 | 第61-62页 |
| ·离心力的选择 | 第62页 |
| 3 结果与讨论 | 第62-65页 |
| ·高表达VEGFR-2细胞的筛选 | 第62-64页 |
| ·U251细胞膜的制备条件的考察结果 | 第64-65页 |
| ·细胞破碎的方法的选择 | 第64-65页 |
| ·离心力的选择 | 第65页 |
| 4 小结 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-67页 |
| 第三章 CMSP的制备及筛选模型的建立和应用 | 第67-86页 |
| 1 仪器和材料 | 第70-71页 |
| ·仪器 | 第70页 |
| ·材料 | 第70-71页 |
| 2 实验方法 | 第71-74页 |
| ·CMSP的制备 | 第71页 |
| ·CMSP中载体与细胞数的比例 | 第71页 |
| ·CMSP的扫描电镜及表面能谱分析 | 第71页 |
| ·细胞膜色谱柱的填装 | 第71-72页 |
| ·模型的建立 | 第72-73页 |
| ·色谱条件 | 第72页 |
| ·溶液配制 | 第72页 |
| ·紫外光谱测定化合物吸收度 | 第72页 |
| ·流动相条件的考察 | 第72-73页 |
| ·模型评价 | 第73页 |
| ·CMC系统的有效使用期限 | 第73页 |
| ·CMC系统的稳定性 | 第73页 |
| ·CMC系统的专属性 | 第73页 |
| ·邻氨基苯甲酰胺类VEGFR-2小分子抑制剂的筛选 | 第73页 |
| ·对照实验 | 第73-74页 |
| 3 结果与讨论 | 第74-84页 |
| ·载体与细胞数的比例 | 第74-75页 |
| ·CMSP的扫描电镜图片及表面能谱分析 | 第75-76页 |
| ·模型的建立 | 第76-78页 |
| ·模型药物的选择 | 第76-77页 |
| ·紫外分光光度法测定化合物吸收度 | 第77页 |
| ·流动相条件的考察 | 第77-78页 |
| ·模型的评价 | 第78-80页 |
| ·CMC系统的专属性 | 第78-79页 |
| ·CMC系统中CMSP随温度和时间的变化规律 | 第79页 |
| ·CMC系统的稳定性 | 第79页 |
| ·CMC系统精密度考察 | 第79-80页 |
| ·邻氨基苯甲酰胺类VEGFR-2小分子抑制剂的筛选 | 第80-82页 |
| ·对照实验 | 第82-84页 |
| 4 小结 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-86页 |
| 全文总结 | 第86-88页 |
| 展望 | 第88-89页 |
| 附录 | 第89-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第104-105页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第105页 |
