| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 第一篇 文献综述 | 第12-22页 |
| 第一章 霉菌毒素的概述 | 第12-14页 |
| 1 黄曲霉素B1 | 第12页 |
| 2 脱氧雪腐镰刀菌烯醇(DON) | 第12-13页 |
| 3 玉米赤霉烯酮(ZEA) | 第13页 |
| 4 赭曲霉素A(OTA) | 第13-14页 |
| 第二章 HT-2毒素研究进展 | 第14-18页 |
| 1 T-2和HT-2的理化性质 | 第14-15页 |
| 2 T-2毒素的毒性作用 | 第15-18页 |
| 2.1 急性毒性作用 | 第15页 |
| 2.2 慢性毒性效应 | 第15-16页 |
| 2.3 T-2毒素的遗传毒性 | 第16页 |
| 2.4 T-2毒素的神经毒性 | 第16页 |
| 2.5 T-2毒素的免疫毒性 | 第16页 |
| 2.6 T-2毒素的血液毒性 | 第16-17页 |
| 2.7 T-2毒素的生殖毒性 | 第17-18页 |
| 第三章 卵母细胞成熟质量的评估标准和调控因素 | 第18-22页 |
| 1 卵母细胞成熟 | 第18页 |
| 2 卵母细胞成熟的评估 | 第18-19页 |
| 3 卵母细胞成熟的影响因素 | 第19-22页 |
| 3.1 细胞骨架 | 第19页 |
| 3.2 氧化还原状态 | 第19-20页 |
| 3.3 表观遗传修饰 | 第20页 |
| 3.4 其他因素 | 第20-22页 |
| 第二篇 试验研究 HT-2毒素通过引起氧化应激诱导的凋亡/自噬影响猪卵母细胞的成熟 | 第22-48页 |
| 第一章 HT-2毒素对猪卵母细胞的成熟有毒性影响 | 第22-38页 |
| 1 材料与方法 | 第23-30页 |
| 1.1 试剂及抗体 | 第23-24页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第24-25页 |
| 1.3 试剂的稀释比例与配制 | 第25-27页 |
| 1.4 猪卵母细胞分离与成熟培养 | 第27-28页 |
| 1.5 免疫荧光染色 | 第28页 |
| 1.6 免疫印迹 | 第28-30页 |
| 1.7 荧光强度分析 | 第30页 |
| 1.8 数据分析 | 第30页 |
| 2 试验结果 | 第30-36页 |
| 2.1 HT-2毒素处理抑制猪卵母细胞第一极体的排出与卵丘的扩散 | 第30-31页 |
| 2.2 HT-2毒素影响猪卵母细胞纺锤体形态与微丝分布 | 第31-33页 |
| 2.3 HT-2毒素导致猪卵母细胞氧化应激 | 第33-34页 |
| 2.4 HT-2毒素导致猪卵母细胞发生早期凋亡与自噬 | 第34-36页 |
| 3 讨论 | 第36-38页 |
| 第二章 HT-2毒素影响猪孤雌胚胎的发育能力 | 第38-48页 |
| 1 材料与方法 | 第39-41页 |
| 1.1 抗体与试剂 | 第39页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第39页 |
| 1.3 抗体与试剂的配制 | 第39-41页 |
| 2 结果 | 第41-46页 |
| 2.1 HT-2毒素降低猪孤雌胚胎的发育能力 | 第41-43页 |
| 2.2 HT-2毒素提高猪卵母细胞的DNA甲基化水平 | 第43-44页 |
| 2.3 HT-2毒素使得猪卵母细胞组蛋白甲基化水平升高 | 第44-46页 |
| 3 讨论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-60页 |
| 全文结论 | 第60-62页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第62-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
