| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩略语中英文对照 | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-31页 |
| 1.1 分子系统学概述及其研究方法 | 第14-18页 |
| 1.1.1 分子系统学概述 | 第14-15页 |
| 1.1.2 分子系统学研究方法 | 第15-18页 |
| 1.2 DNA条形码研究概述 | 第18-25页 |
| 1.2.1 DNA条形码(DNA Barcoding)原理 | 第18-19页 |
| 1.2.2 DNA条形码标准序列的选择 | 第19-21页 |
| 1.2.3 分析流程 | 第21-22页 |
| 1.2.4 DNA生物条形码技术的优势 | 第22页 |
| 1.2.5 DNA生物条形码技术的局限性 | 第22-23页 |
| 1.2.6 DNA条形码在水生生物分类鉴定中的应用 | 第23-25页 |
| 1.3 对虾的种质资源及系统发育学研究进展 | 第25-31页 |
| 1.3.1 对虾科虾类的一般形态特征 | 第25页 |
| 1.3.2 对虾科虾类的分类学 | 第25-26页 |
| 1.3.3 对虾科虾类的分布情况 | 第26-28页 |
| 1.3.4 对虾科分子系统学研究概况 | 第28-30页 |
| 1.3.5 本研究的目的意义 | 第30-31页 |
| 第二章 基于核基因DNA序列的变异分析15种虾类的系统发育关系 | 第31-60页 |
| 2.1 材料 | 第32-35页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第32-34页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第34页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第34-35页 |
| 2.1.4 主要溶液配制 | 第35页 |
| 2.2 方法 | 第35-41页 |
| 2.2.1 基因组DNA提取 | 第35-36页 |
| 2.2.2 PCR扩增 | 第36页 |
| 2.2.3 TBE琼脂糖凝胶电泳检测 | 第36-37页 |
| 2.2.4 TAE回收凝胶电泳检测 | 第37页 |
| 2.2.5 PCR产物的回收和纯化 | 第37页 |
| 2.2.6 序列测定 | 第37-38页 |
| 2.2.7 数据分析 | 第38-41页 |
| 2.3 结果 | 第41-43页 |
| 2.3.1 15种虾类的NaK基因和PEPCK基因序列特征及其变异 | 第41-42页 |
| 2.3.2 分子系统树 | 第42-43页 |
| 2.4 讨论 | 第43-60页 |
| 2.4.1 序列的选择 | 第43-44页 |
| 2.4.2 15种虾类的分子系统进化 | 第44-60页 |
| 第三章 15种对虾的DNA条形码 | 第60-70页 |
| 3.1 材料 | 第60页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第60页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第60页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第60页 |
| 3.1.4 主要溶液配制 | 第60页 |
| 3.2 方法 | 第60-62页 |
| 3.2.1 基因组DNA提取 | 第60页 |
| 3.2.2 PCR扩增 | 第60-61页 |
| 3.2.3 TBE琼脂糖凝胶电泳检测 | 第61页 |
| 3.2.4 TAE回收凝胶电泳检测 | 第61页 |
| 3.2.5 PCR产物的回收和纯化 | 第61页 |
| 3.2.6 序列测定 | 第61页 |
| 3.2.7 数据分析 | 第61-62页 |
| 3.3 结果 | 第62-63页 |
| 3.3.1 15种虾类的COI基因序列的特征及其变异 | 第62-63页 |
| 3.3.2 分子系统树 | 第63页 |
| 3.4 讨论 | 第63-70页 |
| 3.4.1 序列的选择 | 第63-64页 |
| 3.4.2 DNA条形码鉴别虾类的潜在效用 | 第64-70页 |
| 第四章 结语 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
