摘要 | 第2-3页 |
abstract | 第3-4页 |
引言 | 第8-9页 |
1 文献综述 | 第9-21页 |
1.1 循环肿瘤细胞及其临床应用前景 | 第9-10页 |
1.2 循环肿瘤细胞的捕获方法 | 第10-16页 |
1.2.1 物理法 | 第10-12页 |
1.2.2 免疫磁性分离 | 第12-14页 |
1.2.3 微流控技术 | 第14-16页 |
1.3 微纳拓扑结构用于循环肿瘤细胞的捕获 | 第16-19页 |
1.3.1 微纳米材料的捕获技术 | 第16-18页 |
1.3.2 天然物质的微纳米结构 | 第18-19页 |
1.4 软刻蚀技术 | 第19-20页 |
1.5 本论文的研究内容及意义 | 第20-21页 |
2 细胞复刻表面的制备与抗体的表面功能化 | 第21-36页 |
2.1 引言 | 第21页 |
2.2 实验材料 | 第21-23页 |
2.2.1 实验仪器 | 第21-22页 |
2.2.2 实验材料和试剂 | 第22-23页 |
2.3 实验方法 | 第23-26页 |
2.3.1 模板细胞的制备 | 第23页 |
2.3.2 细胞复刻PDMS表面的制备 | 第23-24页 |
2.3.3 模板细胞表面及细胞复刻PDMS表面的表征 | 第24-25页 |
2.3.4 抗体的修饰 | 第25-26页 |
2.3.5 抗体修饰表面的表征 | 第26页 |
2.4 实验结果与讨论 | 第26-35页 |
2.4.1 模板细胞脱水条件优化 | 第26-28页 |
2.4.2 模板细胞比例定量 | 第28-29页 |
2.4.3 模板重复使用性探究 | 第29页 |
2.4.4 细胞复刻PDMS表面的表征 | 第29-32页 |
2.4.5 抗体修饰表面的表征 | 第32-35页 |
2.5 本章小结 | 第35-36页 |
3 细胞复刻表面对细胞捕获性能的研究 | 第36-54页 |
3.1 引言 | 第36页 |
3.2 实验材料 | 第36-38页 |
3.2.1 实验仪器 | 第36-37页 |
3.2.2 实验试剂 | 第37-38页 |
3.3 实验方法 | 第38-42页 |
3.3.1 细胞复刻PDMS表面的形貌对癌细胞捕获性能的研究 | 第38-39页 |
3.3.2 材料表面对癌细胞捕获性能的研究 | 第39-40页 |
3.3.3 材料表面对白细胞黏附性能的研究 | 第40-41页 |
3.3.4 被捕获细胞的表征 | 第41-42页 |
3.3.5 最优表面对CTCs人造血样捕获性能的研究 | 第42页 |
3.4 实验结果与讨论 | 第42-52页 |
3.4.1 形貌结构对细胞复刻PDMS表面的影响 | 第42-44页 |
3.4.2 细胞捕获条件的优化 | 第44-45页 |
3.4.3 材料表面对癌细胞的捕获性能 | 第45-47页 |
3.4.4 材料表面对白细胞的黏附性能 | 第47-50页 |
3.4.5 被捕获细胞的形貌结构 | 第50-51页 |
3.4.6 CTCs人造血样的捕获性能 | 第51-52页 |
3.5 本章小结 | 第52-54页 |
4 模块化小室的制备及其细胞捕获性能的研究 | 第54-69页 |
4.1 引言 | 第54页 |
4.2 实验材料 | 第54-56页 |
4.2.1 实验仪器 | 第54-55页 |
4.2.2 实验试剂 | 第55-56页 |
4.3 实验方法 | 第56-61页 |
4.3.1 模块化小室的制备 | 第56-57页 |
4.3.2 模拟癌症患者CTCs人造血样的制备 | 第57-59页 |
4.3.3 模块化小室对血液处理量的探究 | 第59页 |
4.3.4 模块化小室细胞释放性能的探究 | 第59-60页 |
4.3.5 小室对模拟癌症患者CTCs人造血样捕获性能的探究 | 第60-61页 |
4.4 实验结果与讨论 | 第61-68页 |
4.4.1 模块化小室的制备方法 | 第61-62页 |
4.4.2 模拟癌症患者CTCs人造血样的制备 | 第62-63页 |
4.4.3 模块高度的优化 | 第63-64页 |
4.4.4 小室材料表面的细胞释放率及活性 | 第64-66页 |
4.4.5 小室对CTCs人造血样的捕获性能 | 第66-68页 |
4.5 本章小结 | 第68-69页 |
结论 | 第69-70页 |
创新点 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-77页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第77-78页 |
致谢 | 第78-80页 |