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开口箭中甾体皂苷诱导HL-60和HepG2细胞自噬与凋亡的机制研究

摘要第4-8页
abstract第8-10页
中英文缩略语一览表第11-15页
第一章 引言第15-25页
    1.1 开口箭化学成分的研究进展第15-17页
    1.2 开口箭药理活性的研究进展第17-19页
        1.2.1 抗肿瘤作用第17-18页
        1.2.2 抗炎作用第18页
        1.2.3 抗菌作用第18页
        1.2.4 其他作用第18-19页
    1.3 细胞凋亡的研究进展第19-20页
    1.4 细胞自噬的研究进展第20-22页
    1.5 立项依据第22-25页
第二章 SPD诱导肿瘤细胞凋亡的研究第25-41页
    2.1 实验材料及实验仪器第25-28页
        2.1.1 实验材料第25-26页
        2.1.2 实验仪器第26页
        2.1.3 溶液的配置第26-28页
    2.2 实验操作第28-34页
        2.2.1 细胞的培养及供试样品的配置第28页
        2.2.2 细胞的冻存第28页
        2.2.3 细胞的复苏第28-29页
        2.2.4 细胞的传代培养第29页
        2.2.5 体外细胞毒活性检测(MTT法)第29-30页
        2.2.6 单层贴壁细胞总蛋白的提取第30页
        2.2.7 蛋白定量(BCA法)第30-31页
        2.2.8 蛋白质的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳第31-32页
        2.2.9 线粒体膜电位的测定第32-33页
        2.2.10 AnnexinV/PI细胞凋亡检测第33-34页
        2.2.11 细胞周期的检测第34页
        2.2.12 统计学分析第34页
    2.3 实验结果第34-40页
        2.3.1 SPD的细胞毒作用第34-35页
        2.3.2 SPD阻滞细胞周期第35-36页
        2.3.3 SPD诱导细胞凋亡第36-38页
        2.3.4 SPD通过线粒体途径诱导细胞凋亡第38-40页
    2.4 本章小结第40-41页
第三章 SPD诱导细胞自噬的研究第41-53页
    3.1 实验材料及实验仪器第41-42页
        3.1.1 实验材料第41-42页
        3.1.2 实验仪器第42页
    3.2 实验操作第42-45页
        3.2.1 细胞的培养第42页
        3.2.2 MDC染色观察细胞自噬第42-43页
        3.2.3 GFP-LC3转染HepG2细胞观察LC3表达的情况第43-44页
        3.2.4 蛋白免疫印迹法第44页
        3.2.5 MTT法分析加入抑制剂后细胞存活率的变化第44-45页
    3.3 实验结果第45-50页
        3.3.1 SPD诱导细胞自噬第45-47页
        3.3.2 SPD通过Akt/mTOR/p70S6K信号通路以及AMPK信号诱导HL-60细胞自噬第47-48页
        3.3.3 SPD通过Akt/mTOR/p70s6k信号通路诱导HepG2细胞自噬第48-49页
        3.3.4 SPD诱导细胞自噬促进细胞凋亡第49-50页
    3.4 本章小结第50-53页
第四章 总结与展望第53-55页
    4.1 小结第53-54页
    4.2 展望第54-55页
参考文献第55-59页
附录第59-63页
致谢第63-65页
攻读硕士学位期间发表的论文第65-66页

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