摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第1章 绪论 | 第10-24页 |
1.1 课题背景及研究目的与意义 | 第10-12页 |
1.1.1 研究背景 | 第10-11页 |
1.1.2 研究目的与意义 | 第11-12页 |
1.2 丁醇及微生物发酵法制丁醇现状 | 第12-17页 |
1.2.1 丁醇的优越性及应用 | 第12页 |
1.2.2 发酵法生物制丁醇研究现状 | 第12-14页 |
1.2.3 生物发酵制丁醇存在的问题 | 第14-17页 |
1.3 混合菌发酵现状 | 第17-18页 |
1.4 秸秆生物质原材料的利用 | 第18-20页 |
1.4.1 秸秆资源利用现状 | 第18-19页 |
1.4.2 秸秆化学组成 | 第19页 |
1.4.3 秸秆原料的水解与糖化液制备 | 第19-20页 |
1.5 秸秆为发酵基质的生物丁醇生产 | 第20-21页 |
1.6 课题来源及主要研究内容 | 第21-24页 |
1.6.1 课题来源 | 第21页 |
1.6.2 主要研究内容 | 第21-24页 |
第2章 材料与方法 | 第24-32页 |
2.1 实验材料 | 第24-26页 |
2.1.1 实验菌种 | 第24页 |
2.1.2 实验培养基 | 第24页 |
2.1.3 溶液配制 | 第24-25页 |
2.1.4 实验试剂 | 第25-26页 |
2.1.5 仪器设备 | 第26页 |
2.2 实验方法 | 第26-29页 |
2.2.1 酿酒酵母扩大培养 | 第26-27页 |
2.2.2 酿酒酵母生长曲线测定 | 第27页 |
2.2.3 拜氏梭菌生长曲线测定 | 第27页 |
2.2.4 酵母菌添加时间确定 | 第27页 |
2.2.5 酵母菌添加量确定 | 第27页 |
2.2.6 复合菌系发酵初始pH确定 | 第27-28页 |
2.2.7 水稻秸秆预处理 | 第28页 |
2.2.8 纤维素粗酶液制备 | 第28页 |
2.2.9 水稻秸秆糖化液制备 | 第28页 |
2.2.10 秸秆水解液的产丁醇发酵 | 第28-29页 |
2.3 分析方法 | 第29-32页 |
2.3.1 葡萄糖含量的测定 | 第29页 |
2.3.2 氨基酸含量测定 | 第29-30页 |
2.3.3 ABE发酵代谢末端产物的测定 | 第30页 |
2.3.4 纤维素滤纸酶活测定 | 第30页 |
2.3.5 秸秆纤维素糖化率计算方法 | 第30-31页 |
2.3.6 扫面电镜观测 | 第31页 |
2.3.7 红外光谱分析 | 第31-32页 |
第3章 复合菌系产丁醇发酵体系构建 | 第32-45页 |
3.1 发酵菌株生长曲线测定 | 第32-33页 |
3.2 酵母菌添加时间确定 | 第33页 |
3.3 混合菌接种比例确定 | 第33-36页 |
3.4 发酵最适pH确定 | 第36页 |
3.5 最适条件下复合菌系发酵产丁醇体系各参数动态变化 | 第36-43页 |
3.5.1 最适条件下发酵体系pH变化 | 第36-38页 |
3.5.2 最适条件下复合菌系发酵的底物消耗 | 第38-39页 |
3.5.3 最适条件下复合菌系发酵产丁醇 | 第39-41页 |
3.5.4 最适条件下复合菌系氨基酸含量动态变化 | 第41-43页 |
3.6 本章小结 | 第43-45页 |
第4章 秸秆的生物质丁醇转化 | 第45-57页 |
4.1 秸秆生物质原材料预处理 | 第45-47页 |
4.1.1 预处理后水稻秸秆化学成分变化 | 第45页 |
4.1.2 预处理后水稻秸秆形态结构变化 | 第45-46页 |
4.1.3 预处理后水稻秸秆红外光谱分析 | 第46-47页 |
4.2 纤维素粗酶液制备 | 第47-48页 |
4.3 秸秆水解糖化液制备 | 第48-49页 |
4.4 秸秆水解糖化液的生物质丁醇转化 | 第49-55页 |
4.4.1 秸秆糖化液发酵过程pH动态变化 | 第50-51页 |
4.4.2 秸秆糖化液发酵过程糖耗情况 | 第51-53页 |
4.4.3 复合菌系利用水稻秸秆糖化液产丁醇过程代谢产物动态变化 | 第53-55页 |
4.5 本章小结 | 第55-57页 |
结论 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-66页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第66-68页 |
致谢 | 第68页 |