摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第11-24页 |
1.1 生物制氢 | 第11-16页 |
1.1.1 氢能 | 第11页 |
1.1.2 生物制氢技术的进展概况 | 第11-12页 |
1.1.3 生物制氢的方法及其产氢能力 | 第12-13页 |
1.1.4 影响乙醇型发酵生物制氢的因素 | 第13-15页 |
1.1.5 Ethanoligenens harbinense YUAN-3的基本特性与研究进展 | 第15-16页 |
1.2 菌种共培养发酵产氢 | 第16-18页 |
1.2.1 菌种共培养 | 第16-17页 |
1.2.2 菌种共培养应用于生物制氢 | 第17-18页 |
1.3 磁性纳米材料研究进展 | 第18-21页 |
1.3.1 Fe_3O_4纳米磁性颗粒特性 | 第18-19页 |
1.3.2 Fe_3O_4纳米磁性颗粒在污水处理的应用 | 第19-20页 |
1.3.3 Fe_3O_4纳米磁性颗粒应用于生物制氢 | 第20-21页 |
1.4 课题研究目的和意义 | 第21页 |
1.4.1 课题来源 | 第21页 |
1.4.2 研究目的与意义 | 第21页 |
1.5 本文主要研究内容和技术路线 | 第21-24页 |
第2章 材料与方法 | 第24-31页 |
2.1 实验试剂与设备 | 第24-28页 |
2.1.1 菌种来源 | 第24页 |
2.1.2 主要仪器设备 | 第24-25页 |
2.1.3 实验试剂 | 第25-26页 |
2.1.4 培养基配方 | 第26-28页 |
2.2 实验方法 | 第28-31页 |
2.2.1 菌种活化 | 第28页 |
2.2.2 产气数据监测采集 | 第28页 |
2.2.3 气体分析及氢气产率 | 第28-29页 |
2.2.4 液相产物(乙醇、乙酸)分析 | 第29页 |
2.2.5 细菌生物量测定 | 第29-30页 |
2.2.6 pH值 | 第30页 |
2.2.7 葡萄糖利用率 | 第30页 |
2.2.8 扫描电子显微镜表面形态观察 | 第30-31页 |
第3章 磁性纳米铁强化Ethanoligenens harbinense共培养产氢产乙醇 | 第31-51页 |
3.1 引言 | 第31-32页 |
3.2 磁性纳米铁强化共培养产氢产乙醇可行性分析 | 第32-39页 |
3.2.1 产氢效果分析 | 第32-35页 |
3.2.2 底物利用率和发酵液末端pH分析 | 第35-36页 |
3.2.3 液相末端发酵产物分析 | 第36-37页 |
3.2.4 细菌生长情况分析 | 第37-39页 |
3.3 磁性纳米铁对不同碳源条件下共培养产氢产乙醇的影响 | 第39-50页 |
3.3.1 磁性纳米铁对添加15g/L葡萄糖共培养产氢产乙醇的影响 | 第39-44页 |
3.3.2 磁性纳米铁对添加20g/L葡萄糖共培养产氢产乙醇的影响 | 第44-50页 |
3.4 本章小结 | 第50-51页 |
第4章 磁性纳米铁对Ethanoligenens harbinense不同培养条件的强化效果 | 第51-67页 |
4.1 引言 | 第51页 |
4.2 磁性纳米铁对Ethanoligenensharbinens纯培养产氢产乙醇的影响 | 第51-58页 |
4.2.1 产氢效果分析 | 第52-54页 |
4.2.2 底物利用率和液相末端pH发酵液 | 第54-55页 |
4.2.3 液相末端发酵产物分析 | 第55-56页 |
4.2.4 细菌生长情况分析 | 第56页 |
4.2.5 细菌凝集性分析 | 第56-58页 |
4.3 不同培养条件的产氢产乙醇代谢 | 第58-66页 |
4.3.1 不同培养条件的产氢效果分析 | 第59-62页 |
4.3.2 不同培养条件的底物利用率和液相末端pH发酵液 | 第62页 |
4.3.3 不同培养条件的液相末端发酵产物分析 | 第62-63页 |
4.3.4 不同培养条件的细菌生长情况分析 | 第63-64页 |
4.3.5 不同培养条件的细菌凝集性分析 | 第64-65页 |
4.3.6 不同培养条件的细菌表面形态观察 | 第65-66页 |
4.4 本章小结 | 第66-67页 |
结论 | 第67-69页 |
参考文献 | 第69-78页 |
攻读硕士学位期间发表的论文及其它成果 | 第78-80页 |
致谢 | 第80-81页 |