| 牛蒡根质量标准研究 | 第2-30页 |
| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-6页 |
| 引言 | 第6-8页 |
| 第一章 实验材料 | 第8-9页 |
| 1.1 试剂和材料 | 第8页 |
| 1.2 仪器和设备 | 第8-9页 |
| 第二章 实验方法 | 第9-14页 |
| 2.1 药材性状 | 第9页 |
| 2.1.1 牛蒡根的采集 | 第9页 |
| 2.1.2 牛蒡根的植物学鉴定 | 第9页 |
| 2.1.3 牛蒡根部药材鉴定 | 第9页 |
| 2.1.4 牛蒡根中药学鉴定 | 第9页 |
| 2.2 药材鉴别 | 第9-10页 |
| 2.2.2 薄层色谱鉴定 | 第9-10页 |
| 2.3 药材检查 | 第10-11页 |
| 2.3.1 杂质检查 | 第10页 |
| 2.3.2 水分检查 | 第10页 |
| 2.3.3 总灰分检查 | 第10页 |
| 2.3.4 重金属检查 | 第10-11页 |
| 2.3.5 浸出物含量检查 | 第11页 |
| 2.4 主要成分含量测定 | 第11-14页 |
| 2.4.1 色谱条件与系统适应性试验 | 第11页 |
| 2.4.2 牛蒡根溶液提取方法的考察 | 第11-12页 |
| 2.4.3 方法学考察 | 第12-13页 |
| 2.4.4 样品测定 | 第13-14页 |
| 第三章 实验结果 | 第14-25页 |
| 3.1 药材性状 | 第14-16页 |
| 3.1.1 牛蒡根的采集 | 第14页 |
| 3.1.2 牛蒡根植物学鉴定 | 第14-15页 |
| 3.1.3 牛蒡根部药材鉴定 | 第15-16页 |
| 3.1.4 牛蒡根中药学研究 | 第16页 |
| 3.2 药材鉴别 | 第16-17页 |
| 3.2.1 薄层鉴别 | 第16-17页 |
| 3.3 药材检查 | 第17-19页 |
| 3.3.1 杂质检查 | 第18页 |
| 3.3.2 水分检查 | 第18页 |
| 3.3.3 灰分检查 | 第18页 |
| 3.3.4 重金属检查 | 第18页 |
| 3.3.5 浸出物含量检查 | 第18-19页 |
| 3.4 主要成分含量测定 | 第19-25页 |
| 3.4.1 色谱条件与系统适用性试验 | 第19页 |
| 3.4.2 牛蒡根提取方法的优化 | 第19-21页 |
| 3.4.3 方法学考察 | 第21-23页 |
| 3.4.4 样品测定 | 第23-25页 |
| 第四章 讨论 | 第25-27页 |
| 参考文献 | 第27-30页 |
| 熊果酸经micro RNA-21/PTEN/PI3K/AKT/m TOR通路抑制大鼠血管平滑肌细胞增殖 | 第30-78页 |
| 摘要 | 第30-31页 |
| Abstract | 第31-34页 |
| 引言 | 第34-37页 |
| 第一章 实验材料 | 第37-40页 |
| 1.1 主要试剂和材料 | 第37-38页 |
| 1.2 仪器设备 | 第38-40页 |
| 第二章 实验方法 | 第40-48页 |
| 2.1 SD大鼠胸主动脉VSMCs原代培养基传代培养 | 第40-41页 |
| 2.1.1 取材 | 第40页 |
| 2.1.2 切取组织块并培养 | 第40页 |
| 2.1.3 VSMCs传代培养 | 第40页 |
| 2.1.4 VSMCs鉴定 | 第40-41页 |
| 2.2 预实验筛选 10%胎牛血清造模时间及UA工作浓度及预给药时间 | 第41-48页 |
| 2.2.1 筛选 10%胎牛血清造模时间 | 第41页 |
| 2.2.2 筛选UA有效作用浓度 | 第41-42页 |
| 2.2.3 筛选UA及AG预给药时间 | 第42页 |
| 2.2.4 筛选LY290042 及MK-2206 预给药时间 | 第42页 |
| 2.2.5 荧光定量PCR | 第42-44页 |
| 2.2.6 免疫印迹 | 第44-45页 |
| 2.2.7 脂质体转染PTEN | 第45-47页 |
| 2.2.8 统计学分析 | 第47-48页 |
| 第三章 实验结果 | 第48-66页 |
| 3.1 大鼠平滑肌细胞的培养基鉴定 | 第48页 |
| 3.1.1 wistar大鼠血管平滑肌细胞的原代培养 | 第48页 |
| 3.1.2 wistar大鼠血管平滑肌细胞的免疫荧光鉴定 | 第48页 |
| 3.2 10%胎牛血清造模时间及UA预给药时间的筛选 | 第48-52页 |
| 3.2.1 筛选 10%胎牛血清造模时间 | 第48-49页 |
| 3.2.2 筛选UA有效作用浓度 | 第49-50页 |
| 3.2.3 UA及AG分别预给药时间研究结果 | 第50-51页 |
| 3.2.4 LY290042 及MK-2206 不同预给药时间对VSMCs的抑制率 | 第51-52页 |
| 3.3 mi R-21 拮抗剂对VSMCs内mi R-21、PTENm RNA和PTEN蛋白表达的影响 | 第52-55页 |
| 3.3.1 mi R-21 拮抗剂对VSMCs内mi R-21 及PTENm RNA的影响 | 第52-54页 |
| 3.3.2 mi R-21 拮抗剂对PTEN蛋白表达的影响 | 第54-55页 |
| 3.4 UA对 10%FBS诱导的VSMCs细胞内mi R-21 表达水平的影响 | 第55-56页 |
| 3.5 脂质体转染后PTEN蛋白及PI3K蛋白检测结果 | 第56-59页 |
| 3.6 UA对 10%FBS诱导VSMCs细胞内PTENm RNA及蛋白表达影响 | 第59-62页 |
| 3.7 UA对 10%FBS诱导VSMCs细胞内PI3K蛋白表达影响 | 第62-63页 |
| 3.8 UA对10%FBS诱导VSMCs细胞内Akt蛋白表达影响 | 第63-64页 |
| 3.9 UA对 10%FBS诱导VSMCs细胞内m TOR蛋白表达影响 | 第64-66页 |
| 第四章 讨论 | 第66-72页 |
| 结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-78页 |
| 综述 | 第78-92页 |
| 综述参考文献 | 第87-92页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
