组合酶合成GDP-岩藻糖
| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文对照及英文缩写词表 | 第7-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-18页 |
| 1.1 GDP-岩藻糖的研究进展 | 第10-14页 |
| 1.1.1 GDP-岩藻糖在体内的合成与转运 | 第10-11页 |
| 1.1.2 GDP-岩藻糖的功能 | 第11-13页 |
| 1.1.3 GDP-岩藻糖合成的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2 GDP-岩藻糖合成相关酶类研究进展 | 第14-17页 |
| 1.2.1 葡萄糖激酶 | 第14-15页 |
| 1.2.2 磷酸甘露糖变位酶 | 第15页 |
| 1.2.3 GDP-甘露糖焦磷酸化酶 | 第15-16页 |
| 1.2.4 GDP-甘露糖4,6-脱水酶 | 第16页 |
| 1.2.5 GDP-岩藻糖合成酶 | 第16-17页 |
| 1.3 选题依据、目的和意义 | 第17-18页 |
| 第2章 合成GDP-岩藻糖相关酶的克隆和表达 | 第18-34页 |
| 2.1 材料、试剂与设备 | 第18-23页 |
| 2.1.1 材料 | 第18-19页 |
| 2.1.2 试剂 | 第19-22页 |
| 2.1.3 设备 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-27页 |
| 2.2.1 BL21(DE3)感受态细胞的制备 | 第23页 |
| 2.2.2 GDP-岩藻糖合成相关酶的克隆 | 第23-26页 |
| 2.2.3 GDP-岩藻糖合成相关酶的表达与纯化 | 第26页 |
| 2.2.4 GDP-岩藻糖合成相关酶活力的测定 | 第26-27页 |
| 2.3 结果分析与讨论 | 第27-32页 |
| 2.3.1 GDP-岩藻糖合成相关酶的克隆 | 第27-29页 |
| 2.3.2 GDP-岩藻糖合成相关酶的表达与纯化 | 第29-30页 |
| 2.3.3 GDP-岩藻糖合成相关酶的酶活检测 | 第30-32页 |
| 2.4 结论 | 第32-34页 |
| 第3章 优化合成GDP-岩藻糖相关酶的条件 | 第34-46页 |
| 3.1 材料、试剂与设备 | 第34-35页 |
| 3.1.1 材料 | 第34页 |
| 3.1.2 试剂 | 第34-35页 |
| 3.1.3 设备 | 第35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-37页 |
| 3.2.1 载体的选择 | 第35-36页 |
| 3.2.2 培养基的优化 | 第36页 |
| 3.2.3 IPTG诱导浓度的优化 | 第36页 |
| 3.2.4 诱导时间的优化 | 第36-37页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第37-45页 |
| 3.3.1 载体的选择 | 第37-41页 |
| 3.3.2 培养基优化 | 第41-42页 |
| 3.3.3 IPTG诱导浓度的优化 | 第42-43页 |
| 3.3.4 诱导时间的优化 | 第43-45页 |
| 3.4 结论 | 第45-46页 |
| 第4章 优化GDP-岩藻糖的合成路线 | 第46-61页 |
| 4.1 材料、试剂与设备 | 第46页 |
| 4.1.1 材料 | 第46页 |
| 4.1.2 试剂 | 第46页 |
| 4.1.3 设备 | 第46页 |
| 4.2 实验方法 | 第46-50页 |
| 4.2.1 甘露糖-6-磷酸的合成 | 第46-48页 |
| 4.2.2 GDP-甘露糖的合成 | 第48-49页 |
| 4.2.3 GDP-岩藻糖的合成 | 第49-50页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第50-60页 |
| 4.3.1 甘露糖-6-磷酸的合成 | 第50-56页 |
| 4.3.2 GDP-甘露糖的合成 | 第56-57页 |
| 4.3.3 GDP-岩藻糖的合成 | 第57-60页 |
| 4.4 结论 | 第60-61页 |
| 论文总结 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 附录 | 第70-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
