| 学位论文数据集 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-10页 |
| ABSTRACT | 第10-14页 |
| 第一章 绪论 | 第23-51页 |
| 1.1 引言 | 第23-25页 |
| 1.2 酶固定化技术 | 第25-32页 |
| 1.2.1 酶固定化方法 | 第25-28页 |
| 1.2.1.1 吸附法 | 第25页 |
| 1.2.1.2 共价键结合法 | 第25-27页 |
| 1.2.1.3 交联法 | 第27-28页 |
| 1.2.1.4 包埋法 | 第28页 |
| 1.2.2 新型固定化技术 | 第28-32页 |
| 1.2.2.1 利用光和辐射等固定化技术 | 第28-29页 |
| 1.2.2.2 纳米修饰固定化酶 | 第29-30页 |
| 1.2.2.3 定点固定化技术 | 第30-31页 |
| 1.2.2.4 多酶系统的共固定比 | 第31-32页 |
| 1.3 酶固定化的载体材料 | 第32-35页 |
| 1.3.1 天然大分子 | 第32-34页 |
| 1.3.1.1 天然多聚糖 | 第32-33页 |
| 1.3.1.2 天然蛋白 | 第33-34页 |
| 1.3.2 合成聚合物 | 第34页 |
| 1.3.3 无机载体 | 第34-35页 |
| 1.4 二氧化硅纳米管的制备进展 | 第35-39页 |
| 1.4.1 模板法 | 第35-39页 |
| 1.4.1.1 无机模板 | 第36-37页 |
| 1.4.1.2 有机模板 | 第37-39页 |
| 1.5 本课题的立题背景、意义及内容 | 第39-41页 |
| 1.5.1 立题背景及意义 | 第39-40页 |
| 1.5.2 课题研究的内容 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-51页 |
| 第二章 介孔壁二氧化硅纳米管的制备 | 第51-76页 |
| 2.1 引言 | 第51-55页 |
| 2.2 碳酸钙无机模板的制备 | 第55-63页 |
| 2.2.1 实验原料和药品 | 第55页 |
| 2.2.2 实验仪器及设备 | 第55-56页 |
| 2.2.3 实验过程 | 第56-60页 |
| 2.2.3.1 实验工艺流程 | 第56-57页 |
| 2.2.3.2 碳酸钙的消化与氢氧化钙悬浮液的精制 | 第57页 |
| 2.2.3.3 碳化反应 | 第57-59页 |
| 2.2.3.4 产品后处理 | 第59页 |
| 2.2.3.5 产品的分析与表征 | 第59-60页 |
| 2.2.4 结果与表征 | 第60-63页 |
| 2.2.4.1 TEM表征 | 第60-62页 |
| 2.2.4.2 XRD表征 | 第62页 |
| 2.2.4.3 TG-DSC表征 | 第62-63页 |
| 2.2.4.4 比表面积(BET) | 第63页 |
| 2.3 二氧化硅纳米管的制备 | 第63-73页 |
| 2.3.1 实验试剂和设备 | 第63-64页 |
| 2.3.2 实验过程 | 第64-66页 |
| 2.3.3 表征方法 | 第66页 |
| 2.3.4 实验结果与讨论 | 第66-73页 |
| 2.3.4.1 影响因素的正交优化 | 第66-69页 |
| 2.3.4.2 电镜(TEM和SEM)分析 | 第69-70页 |
| 2.3.4.3 FTIR分析 | 第70页 |
| 2.3.4.4 孔结构和比表面分析 | 第70-72页 |
| 2.3.4.5 XRD分析 | 第72-73页 |
| 2.4 本章小结 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-76页 |
| 第三章 介孔壁二氧化硅纳米管对青霉素酰化酶的固定化 | 第76-107页 |
| 3.1 引言 | 第76-81页 |
| 3.2 实验部分 | 第81-85页 |
| 3.2.1 实验试剂与设备 | 第81-82页 |
| 3.2.2 实验过程 | 第82-85页 |
| 3.2.2.1 青霉素酰化酶在载体上的固定化 | 第82页 |
| 3.2.2.2 酶活力测定 | 第82-84页 |
| 3.2.2.3 酶溶液中蛋白质含量测定 | 第84-85页 |
| 3.2.3 表征方法 | 第85页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第85-94页 |
| 3.3.1 固定化条件对固定化青霉素酰化酶性能的影响 | 第85-88页 |
| 3.3.1.1 酶在磷酸缓冲液和在去离子水中固定化效果对比 | 第85-86页 |
| 3.3.1.2 二氧化硅载体与酶配比的影响 | 第86-87页 |
| 3.3.1.3 固定化温度的影响 | 第87-88页 |
| 3.3.2 二氧化硅纳米管固载青霉素酰化酶的动力学考察 | 第88-89页 |
| 3.3.3 固定化青霉素酰化酶的催化特性 | 第89-93页 |
| 3.3.3.1 酶催化反应最适条件 | 第89-91页 |
| 3.3.3.2 酶的稳定性 | 第91-93页 |
| 3.3.4 分析表征 | 第93-94页 |
| 3.3.4.1 TEM分析 | 第93页 |
| 3.3.4.2 孔分布和比表面测定 | 第93-94页 |
| 3.4 酶催化反应动力学常数的测定 | 第94-103页 |
| 3.4.1 米氏方程式简介 | 第94-97页 |
| 3.4.2 米氏常数的意义及测定 | 第97-98页 |
| 3.4.3 自由青霉素酰化酶米氏常数和最大反应速度的测定 | 第98-101页 |
| 3.4.3.1 试样溶液的配制 | 第98-100页 |
| 3.4.3.2 测定步骤 | 第100页 |
| 3.4.3.3 实验结果和数据处理 | 第100-101页 |
| 3.4.4 固定化青霉素酰化酶米氏常数和最大反应速度的测定 | 第101-103页 |
| 3.4.4.1 试样溶液的配制 | 第101页 |
| 3.4.4.2 测定步骤 | 第101页 |
| 3.4.4.3 实验结果和数据处理 | 第101-103页 |
| 3.5 本章小结 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-107页 |
| 第四章 三种形貌二氧化硅纳米材料对溶菌酶的固定化 | 第107-122页 |
| 4.1 引言 | 第107-108页 |
| 4.2 实验部分 | 第108-111页 |
| 4.2.1 实验试剂和设备 | 第108-109页 |
| 4.2.2 实验过程 | 第109-110页 |
| 4.2.3 表征方法 | 第110-111页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第111-117页 |
| 4.3.1 二氧化硅材料的形貌和尺寸分析 | 第111-113页 |
| 4.3.2 二氧化硅材料的FTIR图谱分析 | 第113-114页 |
| 4.3.3 溶菌酶在二氧化硅载体上的吸附曲线 | 第114-115页 |
| 4.3.4 二氧化硅固定化溶菌酶的催化活性比较 | 第115-116页 |
| 4.3.5 二氧化硅固定化溶菌酶的FTIR分析 | 第116-117页 |
| 4.4 本章小结 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-122页 |
| 第五章 空心二氧化硅纳米管对葡萄糖氧化酶的固定化 | 第122-130页 |
| 5.1 引言 | 第122-123页 |
| 5.2 实验部分 | 第123-125页 |
| 5.2.1 实验试剂和设备 | 第123页 |
| 5.2.2 实验过程 | 第123-125页 |
| 5.2.3 表征方法 | 第125页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第125-126页 |
| 5.3.1 葡萄糖氧化酶在空心二氧化硅纳米管上的固定化 | 第125-126页 |
| 5.3.2 FTIR分析 | 第126页 |
| 5.4 本章小结 | 第126-127页 |
| 参考文献 | 第127-130页 |
| 第六章 结论 | 第130-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第133-134页 |
| 作者简介 | 第134-135页 |
| 导师简介 | 第135-136页 |
| 博士研究生学位论文答辩委员会决议书 | 第136-138页 |
