中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩写词表 | 第11-12页 |
第1章 绪论 | 第12-24页 |
1.1 Amygdalin 及其生物学作用 | 第12-19页 |
1.1.1 Amygdalin 的分解 | 第12-13页 |
1.1.2 Amygdalin 分解产物的毒性 | 第13页 |
1.1.3 Amygdalin 的药理学作用 | 第13-15页 |
1.1.4 Amygdalin 抗肿瘤作用的争议 | 第15-17页 |
1.1.5 Amygdalin 的抗肿瘤作用 | 第17-19页 |
1.2 活性氧与肿瘤 | 第19-22页 |
1.2.1 活性氧的产生及生理作用 | 第19-20页 |
1.2.2 活性氧与肿瘤的发生发展 | 第20-21页 |
1.2.3 活性氧与肿瘤细胞凋亡 | 第21-22页 |
1.3 谷氨酰胺与肿瘤 | 第22-23页 |
1.3.1 谷氨酰胺及其生理功能 | 第22页 |
1.3.2 谷氨酰胺与肿瘤 | 第22-23页 |
1.4 抗氧化与肿瘤 | 第23-24页 |
第2章 Amygdalin 对抗谷氨酰胺(Gln)剥夺诱导的肝癌细胞HepG2 凋亡及其机制的研究 | 第24-38页 |
2.1 实验器材 | 第24-26页 |
2.1.1 主要仪器 | 第24-25页 |
2.1.2 主要试剂配制 | 第25-26页 |
2.1.3 细胞株来源 | 第26页 |
2.2 实验方法 | 第26-37页 |
2.2.1 细胞培养 | 第26页 |
2.2.2 MTT 检测 Amygdalin 对有无 Gln 的培养液培养的HepG2 细胞的毒性作用 | 第26-27页 |
2.2.3 AnnexinⅤ-FITC/PI 双染检测 Amygdalin 对 HepG2 的凋亡的影响 | 第27-28页 |
2.2.4 羟自由基检测 | 第28-29页 |
2.2.5 超氧化物歧化酶活力的测定 | 第29-31页 |
2.2.6 过氧化氢酶(CAT)活力的测定 | 第31-32页 |
2.2.7 细胞 ROS 水平检测 | 第32-33页 |
2.2.8 RT-PCR | 第33-35页 |
2.2.9 Westrn blot 检测蛋白表达水平 | 第35-37页 |
2.3 统计学处理 | 第37-38页 |
第3章 实验结果 | 第38-55页 |
3.1 Amygdalin 对抗谷氨酰胺(Gln)剥夺诱导的肝癌细胞HepG2 凋亡的研究 | 第38-41页 |
3.1.1 MTT 检测无 Gln 时 Amygdalin 对 HepG2 细胞活力的影响 | 第38页 |
3.1.2 AnnexinⅤ-FITC/PI 双染检测无 Gln 时 Amygdalin 对HepG2 细胞凋亡的影响 | 第38-39页 |
3.1.3 RT-PCR 检测无 Gln 时 Amygdalin 对 HepG2 细胞内Bax 和 Bcl-2 mRNA 水平的影响 | 第39-41页 |
3.2 Amygdalin 对抗谷氨酰胺(Gln)剥夺诱导的肝癌细胞HepG2 凋亡机制的研究 | 第41-44页 |
3.2.1 Amygdalin 在细胞内的抗氧化作用 | 第41-44页 |
3.3 Amygdalin 对 HepG2 细胞内抗氧化酶的影响 | 第44-52页 |
3.3.1 RT-PCR 检测无 Gln 时 Amygdalin 对 HepG2 细胞内抗氧化酶 mRNA 水平的影响 | 第44-46页 |
3.3.2 Western Blot 检测无 Gln 时 Amygdalin 对 HepG2 细胞内抗氧化酶蛋白水平的影响 | 第46-49页 |
3.3.3 检测无 Gln 时 Amygdalin 对 HepG2 细胞内抗氧化酶SOD 和 CAT 酶活力的影响 | 第49-50页 |
3.3.4 加入 CAT 抑制剂 3-氨基-1.2.4-三唑(ATM)检测无 Gln 时 Amygdalin 对HepG2 细胞凋亡的影响 | 第50-52页 |
3.4 Amygdalin 的体外抗氧化分析 | 第52-55页 |
3.4.1 检测 Amygdalin 对羟自由基生成的影响 | 第52-53页 |
3.4.2 检测 Amygdalin 和β-葡萄糖苷酶共同孵育后对羟自由基生成的影响 | 第53页 |
3.4.3 检测苯甲醛和苯甲酸对羟自由基生成的影响 | 第53-55页 |
第4章 讨论 | 第55-58页 |
第5章 结论 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-64页 |
个人简介 | 第64-65页 |
致谢 | 第65页 |