| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 小麦蛋白资源概况 | 第11-12页 |
| 1.1.1 小麦概况 | 第11-12页 |
| 1.1.2 小麦面筋蛋白概况 | 第12页 |
| 1.2 小麦蛋白的结构和组成 | 第12-14页 |
| 1.3 小麦蛋白的研究概况 | 第14-15页 |
| 1.3.1 小麦面筋蛋白的酶法改性研究 | 第15页 |
| 1.4 生物活性肽的研究 | 第15-18页 |
| 1.4.1 生物活性肽的概述 | 第15-16页 |
| 1.4.2 生活活性肽的研究概况 | 第16-17页 |
| 1.4.3 谷氨酰胺（Gln）活性肽 | 第17-18页 |
| 1.5 活性肽分离技术的研究概况 | 第18-19页 |
| 1.6 结肠炎模型概述 | 第19-20页 |
| 1.7 课题的研究意义及研究内容 | 第20-22页 |
| 1.7.1 课题的研究目的和意义 | 第20页 |
| 1.7.2 课题的主要研究内容 | 第20-22页 |
| 第2章 富含Gln小麦水解蛋白制备工艺的研究 | 第22-40页 |
| 2.1 材料与方法 | 第22-25页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.2 主要试验仪器 | 第23页 |
| 2.1.3 试验方法 | 第23-25页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第25-39页 |
| 2.2.1 原料的筛选 | 第25-26页 |
| 2.2.2 protease的筛选 | 第26-34页 |
| 2.2.3 响应面法优化复合酶解条件 | 第34-39页 |
| 2.3 本章小结 | 第39-40页 |
| 第3章 富含Gln小麦水解蛋白理化性质的研究 | 第40-50页 |
| 3.1 材料与方法 | 第40-42页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第40-41页 |
| 3.1.2 主要试验仪器 | 第41页 |
| 3.1.3 试验方法 | 第41-42页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第42-48页 |
| 3.2.1 三氯乙酸氮溶解指数 | 第42-43页 |
| 3.2.2 平均肽链长度PCL的测定 | 第43页 |
| 3.2.3 分子量分布分析 | 第43-44页 |
| 3.2.4 氨基酸组成分析 | 第44-45页 |
| 3.2.5 微观形貌分析 | 第45-47页 |
| 3.2.6 红外光谱分析 | 第47-48页 |
| 3.3 本章小结 | 第48-50页 |
| 第4章 富含Gln小麦水解蛋白功能特性的研究 | 第50-56页 |
| 4.1 试验材料与方法 | 第50-52页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第50-51页 |
| 4.1.2 主要试验仪器 | 第51页 |
| 4.1.3 试验方法 | 第51-52页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第52-55页 |
| 4.2.1 超滤前后各组分的氨基酸组成 | 第52-53页 |
| 4.2.2 超滤前后各组分的分子量分布 | 第53页 |
| 4.2.3 Gln含量的测定 | 第53-54页 |
| 4.2.4 DPPH·自由基清除率活性测定 | 第54页 |
| 4.2.5 Fe~(3+)的还原能力的测定 | 第54-55页 |
| 4.3 本章小结 | 第55-56页 |
| 第5章 富含Gln小麦水解蛋白对DSS诱导小鼠结肠炎的影响研究 | 第56-68页 |
| 5.1 材料和方法 | 第56-60页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第56-57页 |
| 5.1.2 主要试验仪器 | 第57页 |
| 5.1.3 试验方法 | 第57-60页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第60-66页 |
| 5.2.1 小鼠体重的变化 | 第60-61页 |
| 5.2.2 小鼠脾脏重量的变化 | 第61-62页 |
| 5.2.3 小鼠结肠组织的病理特征（HE分析） | 第62页 |
| 5.2.4 小鼠的DIA评分结果 | 第62-63页 |
| 5.2.5 小鼠结肠组织抗氧化功能指标的检测结果 | 第63-64页 |
| 5.2.6 炎症因子表达分析 | 第64-66页 |
| 5.3 本章小结 | 第66-68页 |
| 第6章 结论与展望 | 第68-71页 |
| 6.1 本课题的主要结论 | 第68-69页 |
| 6.2 创新与展望 | 第69-71页 |
| 6.2.1 创新点 | 第69页 |
| 6.2.2 展望 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第78页 |