斑蝥素间接竞争性ELISA检测方法的建立及眼斑芫菁体内斑蝥素的免疫荧光检测
| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 1 绪论 | 第10-22页 |
| ·引言 | 第10页 |
| ·国内外研究现状 | 第10-20页 |
| ·斑蝥素的分布 | 第10-11页 |
| ·斑蝥素及相关衍生物的应用研究 | 第11-13页 |
| ·斑蝥素的生物合成和代谢途径的研究 | 第13页 |
| ·斑蝥素合成部位、在虫体内的分布及转移 | 第13-14页 |
| ·斑蝥素的生物学功能研究 | 第14-15页 |
| ·斑蝥素的检测方法研究 | 第15-16页 |
| ·小分子物质的酶联免疫检测法研究 | 第16-17页 |
| ·免疫荧光分析的研究进展 | 第17-20页 |
| ·研究目的和意义 | 第20-21页 |
| ·本研究的创新点 | 第21页 |
| ·技术路线 | 第21-22页 |
| 2 材料和方法 | 第22-26页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·主要器材 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22-23页 |
| ·方法 | 第23-26页 |
| ·免疫检测步骤 | 第23页 |
| ·ELISA 检测中主要反应条件的优化 | 第23-24页 |
| ·标准曲线的制作 | 第24-25页 |
| ·最低检测下限的确定 | 第25页 |
| ·精确度测试 | 第25页 |
| ·眼斑芫菁体内斑蝥素分布的免疫荧光检测 | 第25页 |
| ·大斑芫菁生殖系统的解剖实验 | 第25-26页 |
| 3 结果与分析 | 第26-44页 |
| ·ELISA 检测中主要反应条件的优化 | 第26-31页 |
| ·抗原最佳包被浓度和血清稀释倍数的初步确定 | 第26页 |
| ·抗原最佳包被条件的确定 | 第26-27页 |
| ·封闭最佳作用时间的确定 | 第27页 |
| ·一抗精确稀释度的确定 | 第27-28页 |
| ·抗原抗体最佳竞争反应时间的确定 | 第28-29页 |
| ·酶标二抗稀释度确定 | 第29页 |
| ·二抗最佳反应时间的确定 | 第29-30页 |
| ·底物显色时间的确定 | 第30页 |
| ·抗原抗体竞争体系确定 | 第30-31页 |
| ·最终确定的步骤 | 第31页 |
| ·标准曲线 | 第31-32页 |
| ·最低检测下限 | 第32页 |
| ·精确度测试 | 第32-33页 |
| ·批内变异系数 | 第32-33页 |
| ·批间变异系数 | 第33页 |
| ·眼斑芫菁体内斑蝥素的免疫荧光检测 | 第33-44页 |
| ·实验组和对照组各组织器官中斑蟊素含量 | 第33-42页 |
| ·光密度分析 | 第42-43页 |
| ·大斑芫菁生殖系统 | 第43-44页 |
| 4 讨论 | 第44-45页 |
| 5 主要结论和后续工作 | 第45-46页 |
| ·本研究的主要结论 | 第45页 |
| ·后续工作 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-52页 |
| 附录 | 第52页 |
| A. 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第52页 |
| B. 作者在攻读硕士学位期间参加的科研项目 | 第52页 |
