| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-9页 |
| 缩略词表 | 第9-10页 |
| 1 绪论 | 第10-18页 |
| ·引言 | 第10-11页 |
| ·课题研究背景 | 第11-16页 |
| ·原核蛋白表达系统及其特点 | 第11-13页 |
| ·真核蛋白表达系统及其特点 | 第13-15页 |
| ·光合细菌表达系统及其特点 | 第15-16页 |
| ·研究目的 | 第16页 |
| ·研究内容 | 第16-17页 |
| ·本研究创新之处 | 第17-18页 |
| 2 外源蛋白融合表达载体及融合蛋白 pucC 超表达载体的构建 | 第18-42页 |
| ·实验材料与设备 | 第18-21页 |
| ·实验所用实验菌株、质粒 | 第18页 |
| ·实验中所用引物 | 第18-19页 |
| ·实验所用仪器设备 | 第19-20页 |
| ·实验所用试剂及其配制方法 | 第20-21页 |
| ·实验方法 | 第21-30页 |
| ·引物设计与合成 | 第21-22页 |
| ·目的基因的扩增 | 第22-23页 |
| ·克隆载体 1 pMD19-T-gus 及克隆载体 2 pMD19-T-pRKpucPpucC 的构建 | 第23-26页 |
| ·表达载体 1 pRKlacIqpucPpuc1B-gusHis101AC 及表达载体2 pRKlacIqpucPpuc1B-gusHis101AC/pRKpucPpucC 的构建 | 第26-30页 |
| ·实验结果与分析 | 第30-40页 |
| ·引物设计与合成 | 第30-31页 |
| ·目的基因的扩增 | 第31-32页 |
| ·克隆载体的构建 | 第32-37页 |
| ·表达载体的构建 | 第37-40页 |
| ·本章小结 | 第40-42页 |
| 3 结合转移及蛋白质的诱导表达 | 第42-50页 |
| ·实验材料与设备 | 第42-44页 |
| ·实验所用实验菌株、质粒及其来源 | 第42-43页 |
| ·实验所用仪器设备 | 第43页 |
| ·实验所用试剂及其配制方法 | 第43-44页 |
| ·实验方法 | 第44-47页 |
| ·结合转移 | 第44-46页 |
| ·蛋白质的诱导表达及近红外光谱扫描分析 | 第46-47页 |
| ·实验结果与分析 | 第47-50页 |
| ·接合转移 | 第47页 |
| ·蛋白质的诱导表达及近红外光谱扫描分析 | 第47-50页 |
| 4 pucC 基因的定量 PCR 分析 | 第50-56页 |
| ·实验材料与设备 | 第50-51页 |
| ·实验所用实验菌株、质粒及其来源 | 第50页 |
| ·实验所用引物 | 第50页 |
| ·实验所用仪器设备 | 第50-51页 |
| ·实验所用试剂及其配制方法 | 第51页 |
| ·实验方法 | 第51-53页 |
| ·RNA 的提取 | 第51-52页 |
| ·定量 PCR | 第52-53页 |
| ·实验结果与分析 | 第53-56页 |
| 5 目的蛋白质的提取、纯化及 western blot 分析 | 第56-70页 |
| ·实验材料与设备 | 第56-60页 |
| ·实验所用实验菌株、质粒及其来源 | 第56页 |
| ·实验所用仪器设备 | 第56-57页 |
| ·实验所用试剂及其配制方法 | 第57-60页 |
| ·实验方法 | 第60-65页 |
| ·目的蛋白质的提取 | 第60-61页 |
| ·目的蛋白质的近红外光谱扫描 | 第61页 |
| ·重组蛋白质 LH2 β-GUS 的纯化 | 第61-63页 |
| ·重组蛋白质 LH2 β-GUS 的分析与鉴定—SDS-PAGE 及 western blot 分析 | 第63-65页 |
| ·实验结果与分析 | 第65-70页 |
| ·目的蛋白质的近红外光谱扫描分析 | 第65-67页 |
| ·重组蛋白质 LH2 β-GUS 的 SDS-PAGE 和 Western blot 分析 | 第67-70页 |
| 6 结论及后续工作建议 | 第70-72页 |
| ·主要结论 | 第70-71页 |
| ·后续工作建议 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-78页 |
| 附录 | 第78页 |
| A. 作者在攻读硕士学位期间发表的论文和申请的专利 | 第78页 |
| B. 作者在攻读硕士学位期间参与的科研项目 | 第78页 |
