| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-25页 |
| 前言 | 第25-30页 |
| 1 材料与仪器 | 第30-37页 |
| ·材料 | 第30-35页 |
| ·实验动物及试剂 | 第30页 |
| ·神经胶质细胞原代培养实验材料及试剂的配制 | 第30-32页 |
| ·Recombinant Human TGF-β_1 | 第32页 |
| ·RT-PCR主要试剂的配制 | 第32-33页 |
| ·蛋白质免疫印迹法(Western-blotting)实验材料及试剂的配制 | 第33-35页 |
| ·主要仪器设备 | 第35-37页 |
| 2 实验方法 | 第37-53页 |
| ·动物模型制备、软脑膜厚度测定及脑脊液TGF-β_1检测 | 第37-41页 |
| ·实验动物分组 | 第37页 |
| ·实验动物模型制作和留取标本步骤 | 第37-38页 |
| ·石蜡切片的制作 | 第38页 |
| ·Masson's三重染色法步骤 | 第38-40页 |
| ·脑脊液TGF-β_1检测方法 | 第40-41页 |
| ·显微镜观察 | 第41页 |
| ·大鼠大脑皮层星形胶质细胞的体外培养和观察 | 第41-42页 |
| ·大鼠大脑皮层星形胶质细胞培养 | 第41-42页 |
| ·大鼠大脑皮层星形胶质细胞的鉴定 | 第42页 |
| ·TGF-β_1处理培养的星形胶质细胞 | 第42页 |
| ·细胞形态学变化的光镜观察 | 第42页 |
| ·RT-PCR技术检测细胞内GFAP和CTGF mRNA的表达 | 第42-45页 |
| ·TRIZOL提取细胞总RNA | 第42-43页 |
| ·分析RNA纯度 | 第43-44页 |
| ·分析RNA完整性 | 第44页 |
| ·RT-PCR方法检测星形胶质细胞GFAP和CTGF表达 | 第44-45页 |
| ·Western-blotting检测细胞内GFAP和CTGF表达量变化 | 第45-49页 |
| ·细胞可溶性蛋白提取 | 第45页 |
| ·Bradford法测定总蛋白浓度 | 第45-46页 |
| ·Western-blotting检测细胞内GFAP和CTGF表达量变化 | 第46-49页 |
| ·头颅CT影像资料收集方法 | 第49-51页 |
| ·病例资料 | 第49页 |
| ·蛛网膜下腔出血量的测定方法 | 第49-50页 |
| ·脑室测量 | 第50-51页 |
| ·统计学处理 | 第51-53页 |
| 3 结果 | 第53-67页 |
| ·大鼠脑脊液TGF-β_1浓度值检测结果 | 第53-55页 |
| ·大鼠软脑膜平均厚度值测定结果 | 第55-57页 |
| ·大鼠脑脊液TGF-β_1浓度值与软脑膜平均厚度相关分析 | 第57页 |
| ·大鼠星形胶质细胞原代培养的形态学光镜观察及鉴定 | 第57-60页 |
| ·大鼠星形胶质细胞TGF-β_1刺激后细胞形态学变化 | 第60页 |
| ·培养的大鼠星形胶质细胞在TGF-β_1作用后GFAPmRNA及其蛋白表达量的变化 | 第60-63页 |
| ·培养的大鼠星形胶质细胞在TGF-β_1作用后CTGFmRNA及其蛋白表达量的变化 | 第63-65页 |
| ·影像学结果 | 第65-67页 |
| 4 讨论 | 第67-88页 |
| ·TGF-β_1的结构、功能和分布 | 第67-68页 |
| ·TGF-β_1与脑积水 | 第68-70页 |
| ·凝血酶和凝血酶受体 | 第70-71页 |
| ·脑出血中凝血酶的作用 | 第71-74页 |
| ·SAH中凝血酶的作用 | 第74页 |
| ·凝血酶的抑制性药物 | 第74-75页 |
| ·凝血酶与TGF-β_1过度表达的相关性研究 | 第75-77页 |
| ·星形胶质细胞与脑损伤 | 第77-78页 |
| ·大鼠大脑皮层星形胶质细胞体外培养方法的建立及细胞鉴定 | 第78-79页 |
| ·GFAP与反应性胶质化 | 第79-81页 |
| ·TGF-β_1与脑损伤 | 第81-83页 |
| ·TGF-β_1、结缔组织生长因子(CTGF)与组织纤维化 | 第83-85页 |
| ·脑脊液循环途径与脑膜结构 | 第85-86页 |
| ·交通性脑积水发生机制 | 第86-88页 |
| 5 全文小结 | 第88-90页 |
| 6 参考文献 | 第90-99页 |
| 英文缩略词对照 | 第99-100页 |
| 综述 | 第100-111页 |
| 博士期间发表论文 | 第111-112页 |
| 致谢 | 第112-113页 |
