致谢 | 第1-6页 |
中文摘要 | 第6-8页 |
英文摘要 | 第8-13页 |
第一章 农杆菌遗传转化单子叶植物的研究进展 | 第13-30页 |
1.1 农杆菌介导的遗传转化机理 | 第13-17页 |
1.1.1 农杆菌种类及Ti质粒 | 第14-16页 |
1.1.2 T-DNA的分泌系统 | 第16-17页 |
1.2 农杆菌介导单子叶植物转基因的研究 | 第17-21页 |
1.2.1 农杆菌介导单子叶植物转化的限制因子 | 第17-21页 |
1.2.1.1 植物体的创伤反应 | 第18页 |
1.2.1.2 外植体的选择 | 第18-19页 |
1.2.1.3 农杆菌感染及共培养 | 第19-20页 |
1.2.1.4 筛选标记基因的选择 | 第20-21页 |
1.2.1.5 基因型的影响 | 第21页 |
1.3 转基因水稻中标记基因的去除 | 第21-22页 |
1.4 农杆菌介导法转基因技术的优势及展望 | 第22-25页 |
参考文献: | 第25-30页 |
第二章 作物抗虫转基因的研究 | 第30-47页 |
2.1 抗虫基因工程发展的必要性 | 第30页 |
2.2 抗虫基因种类 | 第30-38页 |
2.2.1 Bt基因的研究和应用 | 第31-34页 |
2.2.1.1 杀虫机理 | 第32-33页 |
2.2.1.2 Bt基因存在的问题 | 第33-34页 |
2.2.2 蛋白酶抑制剂基因研究和应用 | 第34-37页 |
2.2.2.1 蛋白酶抑制剂作用机理 | 第34-35页 |
2.2.2.2 蛋白酶抑制剂和Bt的比较 | 第35-37页 |
2.2.3 植物外源凝集素基因及其它抗虫基因 | 第37-38页 |
2.3 抗虫转基因作物的安全性 | 第38-41页 |
2.3.1 生态安全性分析 | 第38-39页 |
2.3.2 转基因作物的食用安全性分析 | 第39-41页 |
参考文献: | 第41-47页 |
第三章 草坪草生物技术研究进展 | 第47-57页 |
3.1 组织培养和原生质体培养 | 第47-48页 |
3.2 遗传转化 | 第48-50页 |
3.3 筛选标记基因 | 第50-51页 |
3.4 转基因植株 | 第51-52页 |
3.5 安全性讨论 | 第52-53页 |
参考文献: | 第53-57页 |
第四章 农杆菌介导培矮64S的研究 | 第57-70页 |
4.1 材料与方法 | 第58-61页 |
4.1.1 品种、菌株、质粒和试剂 | 第58页 |
4.1.2 愈伤组织诱导 | 第58页 |
4.1.3 双元载体导入农杆菌 | 第58-59页 |
4.1.4 农杆菌培养和共培养 | 第59页 |
4.1.5 GUS检测方法 | 第59-60页 |
4.1.6 抗性愈伤组织的筛选和植株再生 | 第60页 |
4.1.7 水稻基因组DNA的小量提取 | 第60-61页 |
4.2 结果与分析 | 第61-64页 |
4.2.1 不同培养基对培矮64S愈伤诱导的效果 | 第61页 |
4.2.2 光照对培矮64S愈伤诱导及瞬间表达的影响 | 第61-62页 |
4.2.3 培养基对GUS瞬间表达的影响 | 第62页 |
4.2.4 共培养时间对培矮64S转基因瞬间表达的影响 | 第62-63页 |
4.2.5 筛选压对抗性愈伤产生的影响 | 第63-64页 |
4.2.6 分化培养基的筛选 | 第64页 |
4.3 培矮64S转基因植株PCR分析及GUS检测 | 第64-65页 |
4.4 讨论 | 第65-67页 |
参考文献: | 第67-70页 |
第五章 转CrylAc、CpTi基因水稻对纵卷叶螟抗性比较的研究 | 第70-89页 |
5.1 材料与方法 | 第72-74页 |
5.1.1 品种、菌株、质粒 | 第72页 |
5.1.2 农杆菌转化方法 | 第72-73页 |
5.1.3 水稻基因组DNA及mRNA的提取 | 第73页 |
5.1.4 T3代对纵卷叶螟的抗性 | 第73-74页 |
5.1.5 T3代对大螟的抗性鉴定 | 第74页 |
5.1.6 T3代农艺性状考查 | 第74页 |
5.2 结果与分析 | 第74-80页 |
5.2.1 转基因水稻植株的PCR鉴定 | 第74-75页 |
5.2.2 转基因水稻植株的RT—PCR鉴定 | 第75-77页 |
5.2.3 T3代对纵卷叶螟自然条件下的抗性 | 第77-78页 |
5.2.4 T3代对纵卷叶螟接虫条件下的抗性 | 第78-79页 |
5.2.5 T3代对大螟的抗性 | 第79-80页 |
5.3 T3代农艺性状 | 第80-81页 |
5.4 讨论 | 第81-83页 |
参考文献: | 第83-89页 |
第六章 高羊茅组织培养的研究 | 第89-102页 |
6.1 激素对高羊茅愈伤组织诱导及其分化的影响 | 第90-95页 |
6.1.1 材料与方法 | 第90-91页 |
6.1.1.1 材料及灭菌 | 第90页 |
6.1.1.2 愈伤组织诱导 | 第90-91页 |
6.1.1.3 愈伤组织分化 | 第91页 |
6.1.2 结果与分析 | 第91-94页 |
6.1.2.1 激素浓度对出芽、出愈率影响 | 第91-92页 |
6.1.2.2 不同培养基对愈伤诱导的影响 | 第92-93页 |
6.1.2.3 2,4-D+BA不同配比对愈伤诱导的影响 | 第93页 |
6.1.2.4 不同激素配比对愈伤组织分化的影响 | 第93-94页 |
6.1.3 讨论 | 第94-95页 |
6.2 植物调节剂在高羊茅组织培养中的应用 | 第95-99页 |
6.2.1 材料与方法 | 第96页 |
6.2.1.1 材料及灭菌 | 第96页 |
6.2.1.2 愈伤组织诱导 | 第96页 |
6.2.1.3 愈伤组织分化 | 第96页 |
6.2.2 结果与分析 | 第96-98页 |
6.2.2.1 S-3307、PP333对高羊茅愈伤诱导的影响 | 第96-97页 |
6.2.2.2 不同S-3307、PP333浓度对高羊茅分化的影响 | 第97-98页 |
6.2.3 讨论 | 第98-99页 |
参考文献: | 第99-102页 |
附表A 已经命名的Bt蛋白基因(2003.3) | 第102-105页 |
附录B 表目录 | 第105-106页 |
附录C 图目录 | 第106页 |